Ultralydsassistert utvinning av polysakkarider fra Cistanche Tubulosa: prosessoptimalisering, fraksjonsisolering, strukturell karakterisering og anti-tretthetseffekter
Dec 03, 2025
Abstrakt:Denne studien hadde som mål å optimalisere ekstraksjonsprosessen av Cistanche tubulosa polysaccharides (CP) og å undersøke deres strukturelle egenskaper og anti-tretthetseffekter. Veiledet av enkeltfaktoreksperimenter og optimalisert ved bruk av responsoverflatemetodikk, var de optimale forholdene 20 minutters ultralydbehandling, et løsningsmiddel-til-materialeforhold på 20:1 og 220 W ultralydeffekt, som ga 8,55 % CP. Cellulosekolonnekromatografi produserte deretter én nøytral fraksjon (CPN) og tre sure fraksjoner (CPA-1, CPA-2, CPA-3). Blant dem viste CPN den høyeste utvinningen (40,3 %), det høyeste karbohydratinnholdet (39,5 %) og sterk antioksidantaktivitet sammenlignet med CPA-2; derfor ble CPN valgt for grundig karakterisering. Strukturelle analyser avslørte karakteristiske funksjonelle polysakkaridgrupper, en overvekt av glukose og mannose, og bevis for to komponenter med markant forskjellige molekylvekter. In vivo forlenget CPN betydelig vektbærende svømmetid hos mus, reduserte serumblod-urea-nitrogen og laktat, og økte hepatisk glykogen, noe som bekrefter anti-tretthetsaktivitet. Disse funnene gir et vitenskapelig grunnlag for å utvikle Cistanche tubulosa-polysakkarider til funksjonelle produkter mot utmattelse og relaterte kommersielle applikasjoner.
Nøkkelord: Cistanche tubulosa polysakkarider; responsoverflatemetodikk; utvinning prosess; strukturell karakterisering; anti-tretthet; nye fordeler for CP i funksjonell mat og nutraceuticals

Introduksjon
Cistanche tubulosa (Schenk) Wight,en verdsatt medisinsk og spiselig homolog plante kjent som "ørkenens ginseng," har en lang historie med bruk i Kina [1]. Dens viktigste bioaktive bestanddeler inkluderer polysakkarider, fenyletanoidglykosider og iridoider; blant disse utviser polysakkarider viktige fysiologiske funksjoner, som immunmodulerende [2], antioksidant [3], anti-fatigue [4] og hypoglykemiske effekter [5], som viser brede bruksutsikter i farmasøytiske produkter, helseprodukter og funksjonell mat [6]. Tradisjonelle polysakkaridekstraksjonsmetoder (f.eks. nedsenking i varmt vann og tilbakeløp) lider ofte av lang varighet, lav effektivitet, høyt energiforbruk og potensiell skade på polysakkaridstruktur og aktivitet [7–9]. Utover varmtvannsekstraksjon [10] og refluks [11], Teng et al. [12] sammenlignet ultralyd, mikrobølgeovn og kombinert ultralyd-mikrobølgeekstraksjon, og fant ut at den synergistiske ultralyd-mikrobølgemetoden ga det beste utbyttet (11,00%), 1,28% høyere enn varmtvannsekstraksjon, etterfulgt av mikrobølge og ultralyd alene.
Separasjonen og rensingen av polysakkarider tar sikte på å oppnå høy renhet, strukturelt definerte og bioaktive monosubstanser eller spesifikke fraksjoner fra rå polysakkarider som inneholder proteiner, nukleinsyrer, lipider og andre urenheter. Ailadan Maimaitiaili [11] avfarget og deproteiniserte rå Cistanche-polysakkarider med AB-8 makroporøs harpiks, og separerte dem deretter med DEAE-650M-cellulose ved bruk av avionisert vann og en NaCl-gradient, og oppnådde ett nøytralt og fem sure polysakkarider; in vitro viste den nøytrale fraksjonen overlegen antioksidantaktivitet. For tiden fokuserer bioaktivitetsstudier på Cistanche-polysakkarider hovedsakelig på antioksidant-, anti-inflammatoriske og anti-aldringseffekter [13], mens anti-fatigue-undersøkelser er relativt få.
Som en nyere naturlig produktekstraksjonsteknikk tilbyr ultralydassistert ekstraksjon (UAE) kort ekstraksjonstid, høy effektivitet, enkel operasjon og ingen eller lav oppvarming, og unngår dermed termisk nedbrytning av varmefølsomme komponenter og forbedrer utbytte og renhet; det har vært mye brukt for plantepolysakkarider [14]. Imidlertid krever UAE-forhold for å ekstrahere Cistanche tubulosa polysaccharides (CP) ytterligere optimalisering for å maksimere effektiviteten. Responsoverflatemetodikk (RSM), en effektiv design- og optimaliseringstilnærming basert på matematisk modellering, muliggjør en omfattende analyse av flere faktorer og deres interaksjoner for å bestemme optimale parametere.
I denne studien brukte vi RSM for å optimalisere UAE-prosessen for CP, separerte og identifiserte de resulterende rå polysakkaridene, sammenlignet in vitro antioksidantaktivitetene til fraksjoner, og basert på de sterkeste antioksidantaktivitet-evaluerte anti-tretthetseffektene in vivo. Målet er å gi vitenskapelig og teknisk støtte for verdiøkende utnyttelse av Cistanche tubulosa-ressurser og å akselerere oversettelsen til funksjonelle produkter for velværeindustrien.
Cistanche tubulosa polysaccharides: Fordeler

Cistanche fordelsliste

Få High Polysaccharides Cistanche tubulosa
1 Materialer og metoder
1.1 Materialer og instrumenter
Cistanche tubulosa was purchased from the Urumqi dried fruit market; polysaccharides were prepared in-house at Xinjiang Agricultural University. Absolute ethanol, acetone, and ether were analytical grade (Tianjin Zhiyuan Chemical Reagent Co., Ltd.). DPPH was from Shanghai Ruji Biotechnology Development Co., Ltd. ABTS and shiitake polysaccharide (purity >98 %) var fra Solarbio (Beijing).
Hovedutstyr: XL-02A kvern (Yechang Machinery Co., Ltd.); HH‑S digitalt vannbad med konstant temperatur (Jiangsu Jintan Medical Instrument Factory); JBT/C-YCL400T/3P(D) farmasøytisk ultralydprosessor (Jining Jinbait Special Engineering Machinery Co., Ltd.); VP50 vakuumfiltreringsenhet (Beijing Labtech); RE-52B rotasjonsfordamper (Shanghai Yarong Biochemical Instrument Factory); 80-1 sentrifuge (Jintan Hengfeng Instrument Factory); UV-2550 spektrofotometer (Shimadzu, Shanghai).
Dyr: Femti SPF Kunming hannmus, kroppsvekt 20,00±2,00 g, 3–4 uker gamle, kjøpt fra Xinjiang Medical University Laboratory Animal Center (lisens SYXK-Xin 2024-0001).
Cistanche tubulosa polysaccharides: Fordeler

1.2 Metoder
1.2.1 Ekstraksjonsprosess av polysakkarider
Cistanche-skiver ble pulverisert og ført gjennom en 50-mesh sikt. Pulveret ble plassert i en rundbunnet kolbe, blandet med 8 volumer 80 % etanol, refluksert ved 90 grader i 2 timer og filtrert. Resten ble lufttørket. Destillert vann ble tilsatt til den tørkede resten og ekstrahert under ultralyd; ekstraktet ble filtrert, filtratet beholdt, og resten ekstrahert på nytt én gang. De to filtratene ble kombinert og konsentrert til en fjerdedel av det opprinnelige volumet. Tre volumer absolutt etanol ble tilsatt til konsentratet, lot stå ved 4 grader i 12 timer og vakuumfiltrert for å samle bunnfallet. Bunnfallet ble vasket sekvensielt med absolutt etanol, aceton og eter, tørket og veid for å oppnå rå CP.
Cistanche tubulosa polysaccharides: Fordeler

1.2.2 Enkeltfaktoreksperimenter
1.2.2.1 Effekt av løsningsmiddel-til-materiale-forhold på CP-utbytte
Fem porsjoner Cistanche-pulver (4 g hver) ble fremstilt. Ekstraksjonstid og ultralydeffekt ble fastsatt til 20 minutter og 175 W. Løsemiddel-til-materiale-forhold på 10:1, 15:1, 20:1, 25:1 og 30:1 (ml:g) ble testet for deres effekter på CP-utbytte. Hvert eksperiment ble utført i tre eksemplarer.
1.2.2.2 Effekt av ultralydeffekt på CP-utbytte
Fem porsjoner pulver (4 g hver) ble ekstrahert ved det optimale løsningsmiddel-til-materiale-forholdet bestemt i 1.2.2.1, med ekstraksjonstid fastsatt til 20 minutter. Ultralydeffektnivåer på 125, 150, 175, 200 og 225 W ble testet. Trippeleksperimenter ble utført.
1.2.2.3 Effekt av ultralydtid på CP-utbytte
Fem porsjoner pulver (4 g hver) ble ekstrahert ved det optimale forholdet mellom løsemiddel og materiale (fra 1.2.2.1) og optimal ultralydeffekt (fra 1.2.2.2). Ultralydtider på 10, 15, 20, 25 og 30 minutter ble testet. Hver tilstand ble kjørt i tre eksemplarer.
1.2.3 Responsoverflatemetodikk (RSM)
Basert på enkeltfaktorresultater ble et Box-Behnken-design brukt med CP-utbytte som respons og ultralydtid, løsningsmiddel-til-materialeforhold og ultralydkraft som faktorer. RSM-optimalisering ble utført i Design-Expert 8 med en tre-faktor, tre-nivå design (se tabell 1). Eksperimenter ble utført i tre eksemplarer.
Cistanche tubulosa polysaccharides: Fordeler

1.2.4 Bestemmelse av polysakkaridinnhold
Polysakkaridinnholdet ble målt ved den kolorimetriske svovelsyre-antronmetoden [15]. Anthrone (20 g) ble oppløst i konsentrert svovelsyre og fylt opp til 100 ml for å fremstille en 0,2 g/ml løsning. En passende mengde CP ble oppløst og fortynnet til 100 ml. En 1 mL alikvot ble blandet med 5 mL 0,2 g/mL antron-svovelsyre, vortexet, stående i romtemperatur i 5 minutter, oppvarmet i et 90 graders vannbad i 15 minutter, avkjølt og absorbansen målt ved 585 nm. Glukose ble brukt til å lage en standardkurve: Y=0.0081X + 0.0176 (R²=0.9991). Prøveabsorbansen ble erstattet i kurven for å beregne polysakkaridinnhold.
1.2.5 Beregning av polysakkaridutbytte
Polysakkaridutbyttet ble beregnet i henhold til standardformelen (masse av polysakkarid oppnådd i forhold til råstoffmassen), ved å bruke det målte polysakkaridinnholdet.
1.2.6 Rensing av polysakkarider
Crude CP extract was prepared under the optimized conditions. Following Wang et al. [16], Sevag reagent (chloroform:n‑butanol = 4:1, v/v) was used for deproteinization with vigorous shaking for 10 min, followed by centrifugation; the supernatant was collected and the process repeated three times. Eight volumes of 95% ethanol were added to the filtrate and left at 4 °C for 24 h. After centrifugation (8000 r/min, 10 min), the precipitate was collected and freeze‑dried to obtain crude CP. A 10 mg/mL solution was prepared by dissolving 100 mg crude CP in 10 mL distilled water, centrifuged at 7000 r/min for 10 min to remove insolubles, and filtered through a 0.45 μm membrane. The solution was loaded onto a DEAE‑52 cellulose column and eluted stepwise with distilled water and 0.1, 0.3, and 0.5 mol/L NaCl. Eluates were monitored by anthrone–sulfuric acid assay; fractions with absorbance >1,0 ble samlet, konsentrert, dialysert, frysetørket og veid for å oppnå forskjellige polysakkaridfraksjoner. Utbytte (Y) ble beregnet som:
Y = (C × V × D) / (m × P)
hvor C er polysakkaridkonsentrasjonen (mg/ml) av den rensede målløsningen, V er volumet (ml), D er fortynningsfaktor, m er massen av rå CP (g), og P er polysakkaridinnholdet i rå CP.
1.2.7 Sammenligning av antioksidantaktiviteter til fraksjoner
1.2.7.1 DPPH radikal fjerning
Etter Jiang et al. [17] med modifikasjoner ble en 0,2 mmol/L DPPH arbeidsløsning nylaget. Fraksjonsløsninger med 0,2, 0,4, 0,6, 0,8 og 1,0 mg/ml (1 ml hver) ble hver blandet med 2 ml DPPH, vortexet og inkubert i mørket ved romtemperatur i 30 minutter. Absorbansen ble målt ved 517 nm (Ai). Hver test ble triplisert, og vitamin C (Vc) ved samsvarende konsentrasjoner fungerte som en positiv kontroll. Oppfangingshastighet ble plottet mot konsentrasjon og beregnet ved:
DPPH-rensing (%)=[1 − (Ai − Aj) / (A0)] × 100
hvor Ai er A(2 mL DPPH + 1 mL prøve/Vc), Aj er A(2 mL etanol + 1 mL prøve/Vc), og A0 er A(1 mL vann + 2 mL DPPH).
1.2.7.2 ABTS radikal rensing
Etter Xu et al. [18] med modifikasjoner ble 1 mL prøve ved 0,2–1,0 mg/mL blandet med 4 mL ABTS-løsning, vortexet og inkubert i mørket i 6 minutter ved romtemperatur. Absorbansen ble målt ved 734 nm, i tre eksemplarer. Vc ved samsvarende konsentrasjoner var en positiv kontroll. Oppfangingshastighet ble plottet mot konsentrasjon og beregnet ved:
ABTS-rensing (%)=[1 − (Ai − Aj) / (A0)] × 100
hvor Ai er A(1 mL prøve/Vc + 4 mL ABTS), Aj er A(1 mL prøve/Vc + 4 mL vann), og A0 er A(1 mL vann + 4 mL ABTS).
1.2.8 Strukturanalyse av polysakkaridfraksjoner
1.2.8.1 Fourier-transform infrarød spektroskopi (FTIR)
Etter Zhang WenChao et al. [19] med modifikasjoner ble 2 mg forbehandlet polysakkarid blandet med 200 mg tørket KBr, malt og presset til pellets. Spektra ble samlet fra 400–4000 cm⁻¹ ved 4 cm⁻¹ oppløsning med 32 skanninger.
1.2.8.2 Molekylvektbestemmelse
Etter Zhang Jiayuan [20] med modifikasjoner ble 5 mg prøve oppløst i 0,05 mol/L NaCl til 5 mg/ml, sentrifugert og filtrert gjennom en 0,22 μm membran. Molekylvekten ble bestemt ved HPGPC med to polymerbaserte vannløselige SEC-kolonner (8 mm × 300 mm) i serie, detektor: Waters RI; mobil fase: 0,05 M NaCl; strømning: 0,50 ml/min; kolonnetemperatur: 40 grader ; injeksjon: 30 μL. Kalibreringskurver var:
Lg Mp–RT: y=−0,1359x + 9.4523 (R²=0.9974)
Lg Mw–RT: y=−0,1375x + 9.5035 (R²=0.9976)
Lg Mn–RT: y=−0,1368x + 9.4749 (R²=0.9971)
Molekylvekter ble beregnet tilsvarende.
1.2.8.3 Monosakkaridsammensetning
Etter Naxin S et al. [21], prøver ble behandlet og analysert ved ionekromatografi/HPLC. Standarder (5 mg hver av rhamnose, arabinose, galaktose, glukose, xylose, mannose, galakturonsyre, glukuronsyre, glukosamin HCl, galaktosamin HCl; 10 mg fucose) ble oppløst og laget til 10 ml, deretter fortynnet til en rekke konsentrasjoner. Kromatografi brukte et Thermo U3000-system med en Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18-kolonne (4,6 mm × 250 mm, 5 μm); mobil fase: acetonitril:fosfatbuffer (12 g/L KH2PO4, pH justert til 6,8 med 2 M NaOH)=17:83 (v/v), isokratisk; strømning 0,8 ml/min; kolonne 30 grader; deteksjon 250 nm; injeksjon 10 μL.
1.2.9 Anti-fatigue-eksperimenter av polysakkaridfraksjoner
1.2.9.1 Dyregruppering og administrasjon
Etikkgodkjenning Nei. 2023048. Etter 3 dagers akklimatisering ble 50 mus randomisert i fem grupper (n=10): blank kontroll; positiv kontroll (shiitake polysakkarid 300 mg/kg); lavdosefraksjon (150 mg/kg); middels dose fraksjon (300 mg/kg); høydosefraksjon (600 mg/kg). Fraksjoner og kontroller ble administrert med sonde i 15 dager; mus hadde fri tilgang til mat og vann.
1.2.9.2 Vektbærende svømmeprøve
Fem timer etter den siste sonden ble en blyvekt lik 7 % av kroppsvekten festet til hver musehale. Mus svømte i en tank 60 cm dyp ved 30±2 grader. Tiden fra nedsenking til hodet forble neddykket i 10 s uten å gjenopprette overflaten ble registrert som den uttømmende svømmetiden.
1.2.9.3 Blod urea nitrogen (BUN)
Etter svømming ble blod samlet via sinus orbital i hepariniserte rør og sentrifugert ved 3000 r/min i 10 minutter. BUN ble målt strengt i henhold til kitinstruksjonene.
1.2.9.4 Blodlaktat
Serum (20 μL) was processed per kit instructions. Absorbance was read at 530 nm (1 cm pathlength) with double-distilled water as zero, and lactate concentration calculated.
1.2.9.5 Hepatisk glykogen
Umiddelbart etter blodprøvetaking ble mus avlivet ved cervikal dislokasjon. Lever ble skåret ut, skylt i saltvann, tørket og 80 mg vev ble plassert i et rør med 3 volumer alkali (pH 8,0). Prøver ble kokt i 20 minutter, avkjølt, og glykogen ble kvantifisert i henhold til instruksjoner for sett.
1.2.10 Dataanalyse
Data ble analysert med SPSS 17.1 og rapportert som gjennomsnitt ± SD (X±S). Enveis ANOVA med varianshomogenitetstesting ble brukt; P < 0,05 ble ansett som statistisk signifikant. Figurer ble utarbeidet i Origin 2021 og GraphPad Prism 9.
Kommersiell oversettelse og applikasjonshøydepunkter
Ny plassering av fordeler: Det optimaliserte nøytrale Cistanche-polysakkaridet (CPN) viste doble antioksidanter og anti-tretthetseffekter-forlenget utholdenhet, redusert BUN og laktat, og forhøyede leverglykogen-støttende påstander som "støtter utholdenhet", "hjelper til med å redusere treningsindusert tretthet," og "antioksidantstøtte."
Produktformater: Klar til å blande utholdenhetsdrikker, gel-shots, funksjonelle gummier og kapsler. Kombiner CPN med elektrolytter, B-vitaminer og karbohydrater med lav GI for sportsformuleringer; eller med de tradisjonelle Cistanche-fenyletanoidglykosidene for synergistiske "energi + utvinning" SKU-er.
Behandlingsveiledning: UAE-forhold (20 min, 20:1 løsemiddelforhold, 220 W) er skalerbare og energieffektive; DEAE-52 fraksjonering gir en blynøytral fraksjon (CPN) med høyere karbohydratinnhold og aktivitet, noe som muliggjør konsekvent standardisering (f.eks. større enn eller lik 39 % karbohydrat, HPGPC-fingeravtrykk med bimodal Mw).
Samsvar og begrunnelse: Bruk de nåværende in vivo-resultatene for å underbygge struktur-/funksjonspåstander; utvide med menneskelige pilotforsøk som måler tid til utmattelse, laktatkinetikk og opplevd anstrengelse. Påfør clean-label ekstraksjon og løsemiddelerklæringer.
Kvalitetskontroll: Bruk FTIR-markørbånd, monosakkaridforhold (overveiende glukose/mannose) og HPGPC-molekylvektprofil som frigjøringskriterier. Antioksidantanalyser (DPPH/ABTS) som aktivitetskontroller i prosessen.
Forfattertilknytninger og referanser (autoritativ kilde)
DUAN Jihua1, HAN Haixia2,+, ZHAO Wenyan3, JIA Mingxi2, SUN Jingjing2, ZHOU Jixiang2, SONG Suqin4, ZHU Dongliang3*, BAO Xiaowei2*
(1. Xinjiang Sikai Food R&D Center (Co., Ltd.), Changji, Xinjiang 831100; 2. College of Food Science and Pharmacy, Xinjiang Agricultural University, Urumqi 830052, Kina; 3. Pharmaceutical and Instrument Testing Institute, Logistics Department of Xinjiang Military Region, 40. Xinjiang Military Region, 4. Urumqi Comprehensive Experimental Station, Xinjiang Academy of Agricultural Sciences, Xinjiang, Urumqi 830052)
Referanser
[1] ZHAO Hongting, XIN Guoxiong, GUO Yuan. Forskningsfremgang for Cistanchis sinensis, en tradisjonell kinesisk medisin med samme kilde til mat og medisin. Kinesisk urtemedisin, 2025, 56(09): 3316–3329.
[2] YANG MH, CHEN RH, ZHOU X, et al. Forskningsfremgang på farmakologiske effekter og mekanismer til polysakkarider. Starch-Stärke, 2024, 76(9–10): 2300168.
[3] MU S, YANG WJ, HUANG G L. Antioksidantaktiviteter og mekanismer til polysakkarider. Chem Biol Drug Des, 2021, 97(3): 628–632.
[4] ZHANG SS, LIU B, YAN GY, et al. Kjemiske egenskaper og anti-tretthetseffekt av polysakkarid. J Food Biochem, 2022, 46(1): e14015.
[5] FU Y, WANG LW, JIANG GCA, et al. Anti-diabetisk aktivitet av polysakkarider fra var. Li. Foods, 2022, 11(10): 1464.
[6] CHEN Changmao, GAZANG Zhaxi, WANG Jie, et al. Fremdrift av forskning på aktive komponenter og farmakologisk mekanisme til Cistanchiakis. Kinesisk urtemedisin, 2025, 56(12): 4464–4477.
[7] WANG Wenli, ZHANG Jinling, WEI Yaning, et al. Fremdrift av naturlig polysakkaridekstraksjon, rensing og bioaktivitet. Food Industry Science and Technology, 2022, 43(22): 470–480.
[8] GONG P, WANG SY, LIU M, et al. Ekstraksjonsmetoder, kjemiske karakteriseringer og biologiske aktiviteter av sopppolysakkarider: En minigjennomgang. Carbohydr Res, 2020, 494: 108037.
[9] CHEN X, LIU YB, DENG Y, et al. Primærstudie om effekt av ekstraksjonsmetoder på egenskapene og aktivitetene til polysakkarider. Molecules, 2025, 30(1): 148.
[10] JIANG Huabin, LIU Lisha, ZHANG Qing, et al. Samtidig separasjon og rensing av rørformede Cistanche-fenyletanoidglykosider og polysakkarider ved hjelp av membranseparasjonsteknologi. Matvitenskap og teknologi, 2019, 44(07): 229–234.
[11] MAIMAITIAILI Ailadan. Studie på ekstraksjon, separasjon og rensing av polysakkarider fra Herba Cistanche og deres in vitro immunologiske aktivitet. Urumqi: Xinjiang Medical University, 2021.
[12] TENG Liping, MU Long, LUO Feng, et al. Metode for å ekstrahere rå polysakkarider fra Cistanche tubulosa og dens effekt på fjerning av difenylradikal. Guizhou Agricultural Sciences, 2011, 39(01): 66–68.
[13] BAI Dongwen. Effekter av ekstrakter av Pedicularis-blomst og Cistanche på hippocampus og tarmmikrobiota under hypoksi i stor høyde. Urumqi: Xinjiang Agricultural University, 2023.
[14] JING YS, ZHANG SL, LI MS, et al. Ekstraksjon, struktur og bioaktiviteter av polysakkarider. Foods, 2022, 11(14): 2126.
[15] GUO Xiaolei, ZHU Sichao, ZHAI Xufeng, et al. Sammenligning av antronsulfat- og fenolsulfatmetoder for å bestemme Ganoderma-polysakkarider. Chinese Journal of Traditional Chinese Medicine, 2010, 28(09): 2000–2002.
[16] WANG Senzheng, SUN Yongfang, ZHOU Ye, et al. Optimalisering av ekstraksjon, strukturell karakterisering og effekter på funksjonell forstoppelse av Wen Curcuma polysakkarid. Forskning og utvikling av naturprodukter: 1–17.
[17] JIANG Zhixuan, CAI Zifu, DONG Sisi, et al. Kjemisk modifisering av piggete pærepolysakkarider og analyse av antioksidant- og hypoglykemiske aktiviteter. Matindustrivitenskap og teknologi: 1–20. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025020006.
[18] XU Qing, YANG Jiang, LI Anding. Sammenligning av viktige funksjonelle komponenter og antioksidantaktiviteter til pasjonsfrukt fra forskjellige opphav. Modern Food Science and Technology, 2023, 39(08): 94–102.
[19] ZHANG CW, ZOU YF, ZOU Y, et al. Ultralydsassistert ekstraksjon av polysakkarid fra Paeoniae Radix alba: ekstraksjonsoptimalisering, strukturell karakterisering og antioksidantmekanisme in vitro. Int J Biol Macromol, 2024, 268: 131816.
[20] ZHANG Jiayuan. Isolering og rensing av brenneslepolysakkarider, strukturell identifikasjon og hypoglykemisk aktivitet. Xi'an: Shaanxi University of Science and Technology, 2021.
[21] SUN NX, ZHAO YN, YIN M Y. Ekstraksjon, rensing, struktur og bioaktiviteter av polysakkarider fra maitake: En gjennomgang. J Food Meas Charact, 2023, 17(6): 6200–6213.
[22] WAN Yue, QI Jiying, ZENG Hong, et al. Optimalisering av ultralydsassistert ekstraksjon av shiitake-polysakkarider ved responsoverflatemetodikk. Bioteknologibulletin, 2015, 31(01): 79–85.
[23] LI Li, ZHANG Sai, HE Qiang, et al. Anvendelse av responsoverflatemetodikk i eksperimentell design og optimalisering. Laboratory Research and Exploration, 2015, 34(08): 41–45.
[24] MA Qvhuan, SHI Xiaofeng, SHEN Wei, et al. Optimalisering av polysakkaridekstraksjon av sederfurenål ved responsoverflateanalyse. Chinese Journal of Traditional Chinese Medicine, 2018, 33(03): 1106–1110.
[25] ZHAO Jinsong, PENG Jingjing, ZHANG Liang, et al. Sammenlignende studie om forbedring av bismak i baijiu ved bruk av forskjellige aktiverte karboner. China Brewing, 2025, 44(09): 179–186.
[26] WU Huiqiong, WU Hailian, XIAO Nan, et al. Plukkemulsjoner av Mosla chinensis flyktig olje synergistisk stabilisert av nanokrystallinske cellulose/mais-stivelse komposittpartikler. Matindustrivitenskap og teknologi: 1–27. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025060255.
[27] WU Shuang. Effekt av fucoidan på stabiliteten til proteinbaserte Pickering-emulsjoner. Dalian: Dalian Polytechnic University, 2022.
[28] LIN Ying, ZHENG Meixia, CHEN Changmei, et al. Ultralydassistert tofaseekstraksjon av jasminsvart te-polysakkarider og antioksidantaktivitet. Chemistry and Bioengineering, 2025, 42(09): 35–42.
[29] WANG Yihan, XIE Qingyun, TENG Jianwen, et al. Effekter av isolasjon og rensing på Tremella polysakkaridstruktur og in vitro lipidsenkende aktivitet. Food Industry Technology, 2025, 46(05): 81–90.
[30] BAN Shidong, ZONG Chunyang, WANG Xiaodan, et al. Optimalisering av Lactobacillus plantarum-fermentering av Polygonatum for å øke polysakkaridutbytte og in vitro prebiotisk aktivitet. Matindustrivitenskap og teknologi: 1–18. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025030047.
[31] MO Yunfeng, CHEN Zixuan, PENG Junying, et al. Effekter av tørkeprosesser på gresskarpulveregenskaper og antioksidantkapasitet. Matindustrivitenskap og teknologi: 1–19. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025040072.






