Karakterisering av sytten komponenter i kultiverte sistancher Herba fra Tarim-ørkenen via HPLC-MS

[Abstrakt]Mål: Å identifisere de kromatografiske komponentene til 60 % metanolekstrakt iCistanches deserticola Herbadyrket i Tarim-ørkenen av HPLC-MS.

Metode: HPLC-MS-analyse ble utført på en Agilent ZOＲBAX Eclipse Plus C18-kolonne (6 mm × 250 mm, 5 μm)． Den mobile fasen var acetonitril-0. 1% vandig maursyreløsning ved gradienteluering ved en strømningshastighet på 1 ml·min-1, og deteksjonsbølgelengden var 254 nm. Kolonnetemperaturen ble satt til 25 grader, og injeksjonsvolumet var 10 μL. Resultat: Seksten kromatografiske topper / sytten komponenter ble nøyaktig identifisert ved å sammenligne retensjonstiden, molekylvekten og fragmentionene til forbindelsene vi isolerte og identifiserte. Disse kromatografiske komponentene ble bestemt som coniferin, demethyl syringin, syringin, echinacosid, cistanosid A, verbascoside (tubulosid A), cistanosid B, isoverbascosid, 2'-acetylcistanosid A, cistanosid C, isosistanosid C,2'-acetylverbascosid, A,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,; cistanoside J.

Konklusjon: HPLC-MS-metoden er egnet for identifisering av de kromatografiske komponentene til 60 % metanolekstrakt i Cistanches Herba. Denne studien vil gi vitenskapelig bevis for en omfattende analyse av de kjemiske komponentene i denne medisinske urten.

［Stikkord］ Cistanches deserticolaHerba; Cistanche; HPLC-MS; metanolekstrakt

Cistanche deserticola YCMa

Cistanche deserticola, også kjent som "ørkenginseng",er en kjent tonic kinesisk medisin, som er distribuert i Indre Mongolia, Ningxia, Gansu og Xinjiang i Kina [1].Det har effekten av å tonifisere nyre-yang, fordele blodessens, fukte tarmene og avføring. Det brukes ofte i klinikker for å behandle mannlig impotens, kvinnelig infertilitet, forkjølelsessmerter i midje og kne, blodstase forstoppelseosv. [2-3].Cistanche deserticola, som erinkludert i den første delen av Chinese Pharmacopoeia (2015-utgaven), er den tørkede kjøttfulle stammen av Cistanche deserticola og Cistanche tubulosa (4). Vårt forskerteam har utført systematisk og dyptgående forskning på Cistanche-planter i mange år.De kjemiske komponentene i Cistanche-planter er hovedsakelig fenyletanoidglykosider, i tillegg til iridoider og deres glykosider, lignaner og deres glykosider, benzylalkoholglykosider, etc.[5]. Moderne farmakologiske studier viser at fenyletanolglykosider, hovedkomponentene i slekten, har nevrobeskyttende, antioksidant, leverbeskyttelse, antibakteriell, antiviral, anti-tumor, anti-inflammatorisk og andre effekter [6-11].

Desert ginseng

I Kina er Cistanche deserticola distribuert i det vestlige indre Mongolia, det nordlige Xinjiang og Qaidam-bassenget i Qinghai, men ikke i Tarim-bassenget i det sørlige Xinjiang. På slutten av 1990-tallet, for å beskytte Tazhong-oljefeltet og kontrollere ørkenen, introduserte oljefeltets hovedkvarter et stort antall Haloxylon-ammodendron rundt Tazhong-oljefeltet og på begge sider av ørkenmotorveien og inokulerte Haloxylon-ammodendronen med cistanche, som har vært mer enn 10 år. På grunn av det varme klimaet i Sør-Xinjiang og de gode dryppvanningsforholdene i oljebasen, er utbyttet av cistanche deserticola svært høyt, og utbyttet av fersk cistanche deserticola per mu når mer enn 500 kg [8]. Mange kjemiske komponenter i Cistanche deserticola har produsert et stort antall isomerer på grunn av forskjellige koblingsposisjoner av substituenter. Dette bringer store vanskeligheter med å identifisere den kromatografiske toppen av dette medisinske materialet. Det er vanskelig å nøyaktig identifisere komponentene i den kromatografiske toppen hvis man bare stoler på LC-MS uten monomerforbindelser som kontroll. Derfor er det få litteraturrapporter om dette arbeidet i tidlig fase. Forfatteren isolerte mange monomerforbindelser [9-11] fra Cistanche deserticola dyrket i Tazhong-ørkenen på et tidlig stadium. Gjennom disse monomerforbindelsene oppnådd i det tidlige stadiet ble HPLC partielle kromatografiske topper av 60% metanolekstraktet av Cistanche deserticola nøyaktig identifisert. Dette vil ikke bare unngå gjentatt identifikasjon av noen kjente forbindelser i de kjemiske bestanddelene i Cistanche deserticola, men også gi en viss referanse for videre forskning på kvalitetskontrollen av det medisinske materialet. I denne artikkelen ble 17 komponenter av 0% metanolekstraktet av Cistanche deserticola identifisert ved HPLC-MS.

Cistanche deserticola skive

Klikk her for å se Cistanche-produkter

【Be om mer】 E-post: xue122522@foxmail.com / WhatsApp: 0086 18599088692 / Wechat: 18599088692

1.Materiale

Inova-500 kjernemagnetisk resonansinstrument (Varian, USA); 6320IonTrap LC-MS massespektrometer, EclipseXDB-C18 kolonne (4,6 mm × 250 mm, 5 μ m) (Agilent, USA); QUINTIX313-1CN type 1/10000 elektronisk balanse (Sedaris Division); KQ-500DV ultralydsrenser (Jiangsu Kunshan Ultrasonic Instrument Co., Ltd.); KMUP - Ⅰ Trace Analytical Ultra Pure Water Generation System (Chengdu Haochun Instrument Equipment Co., Ltd.).

De 39 kontrollstoffene som ble brukt i dette eksperimentet ble alle isolert fra ørkendyrket Cistanche deserticola i Tazhong av forfatteren på et tidlig stadium, og deres strukturer ble bestemt ved NMR og andre spektroskopiteknikker. Strukturene til 39 kontrollprøver ble identifisert som Cistanche deserticoside J, Cistanche deserticoside K, Cistanche deserticoside L, Cistanche deserticoside M, Cistanche deserticoside N, epimeridinosideA, Isocistancheside C, angiocyanin B, Cistanche heterophyllico, Cistanche deserticosid, de Cistanche deserticosid C, Cistanche cymosin, 2 '- acetyl Cistanche deserticosid A, 2' - acetyl Cistanche deserticosid A, Cistanche deserticola B, Cistanche deserticola A, Echinoside A, Cistanche deserticola glycosid E, Salidroside, 6 '- salinetylsalidroside, syringer, syringer (2E, 6E) - 3, 7-dimetyl-8-hydroksiktadien-1-O- - D-glukosid, (+) - syringin, (+) - syringin-4'- O- - D-glukopyranosid, (+) - isoeucomminA, eucomminA, eucomminA, eucomminA, eucomminA, eucomminA, (+) D-glukosid, larviciding-4 '- O- - D-glukosid, larvicidering-4-O- - D-glukosid- - D glucopyranosid, hesperidin A, område til side A, 6-deoksykatapol. Renheten til alle referansestoffene ovenfor er mer enn 98,0 %. Acetonitril er kromatografisk rent (DikmaPure, USA), vann er ultrarent vann, og andre reagenser som brukes i testprosessen er analytiske rene reagenser, produsert av Beijing Chemical Plant.

Det medisinske materialet som ble brukt i dette eksperimentet, Cistanche deserticola, ble samlet inn fra ørkenområdet Tazhong, Xinjiang, i november 2010. Det ble identifisert av professor Tu Pengfei ved School of Pharmacy ved Peking University som den tørkede kjøttfulle stammen til Leobaceae-planten Cistanche deserticola. Prøven ble lagret i Modern Research Center of Traditional Chinese Medicine ved Peking University (prøvenummer: CD201011).

Cistanche deserticola skive

2.Metoder og resultater

2.1 Klargjøring av referanseløsning

Ta ca. 1 mg av hver av de 39 kontrollprøvene som ble oppnådd fra Cistanche deserticola i det tidlige stadiet, vei dem nøyaktig, legg dem i henholdsvis en 5 ml målekolbe, løs dem opp med metanol, og volum dem til skalaen, og få deretter enkeltkontrollløsningen.

2.2 Klargjøring av prøveløsning

Med henvisning til den kinesiske farmakopéen, 2015-utgaven, ta omtrent 1 g av produktpulveret (gjennom den fjerde sikten), vei det nøyaktig, legg det i en 100 ml brun flaske, tilsett nøyaktig 50 ml 60 % metanol, tapp det, rist det godt, vei massen, bløtlegg det i 40 minutter, vei det i 30 minutter igjen, tilsett 50 % metanol for å utgjøre den reduserte massen, rist den godt, la den stå, ta supernatanten og bruk 0,45 μM mikroporøs membranfiltrering, ta det kontinuerlige filtratet for å få testløsningen.

2.3 Kromatografiske forhold

AgilentEclipse XDB-C18 kromatografisk kolonne (4,6 mm × 250 mm, 5 μm), deteksjonsbølgelengde 254 nm, kolonnetemperatur 25 grader ; Ved å bruke acetonitril (A) - 0.1% vandig maursyreløsning (B) som mobil fase, gradienteluering (0 - 20min, 5% - 15% A; 20 - 50min, 15% - 30% A; 50 - 60min, 30% - 50% - 50% A; A); Strømningshastighet: 1,0mL · min-1, injeksjonsvolum: 10 μL.

2.4 Massespektrumforhold

Kapillærtemperatur 350 grader; Kapillærspenning 3500V; Strømningshastighet for kappegass (nitrogen) 12,0L · min-1; Hjelpegass (nitrogen) trykk 206,8kPa; Hele skanningsområdet for massespektrometri er m/z 50~1000; Kollisjonsgass helium, kollisjonsenergi velges automatisk under testen; Samle 1 nål for hver positive og negative ionemodus.

2.5 Test av et referansestoff

De 39 referanseløsningene fremstilt under 2.1 ble testet under 2.3 kromatografiske betingelser og 2.4 massespektrometriske betingelser, og deres retensjonstid og relative molekylvekt ble registrert (tabell 1).

2.6 Bestemmelse av prøveløsning

Ta det medisinske materialet Cistanche deserticola samlet fra ørkenområdet Tazhong, Xinjiang, og klargjør testløsningen i henhold til metoden beskrevet i 2.2. Utfør deretter bestemmelsen i henhold til de kromatografiske forholdene beskrevet i 2.3 og massespektrometribetingelsene beskrevet i 2.4, og bestem HPLC-kromatogrammet og massespektrometrien i positiv og negativ ionemodus (figur 1-3).

Fig. 1 HPLC-kromatogram av 60 % metanolekstrakt av Cistanches Herba

Fig. 2 Positivt TIC MS-kromatogram av 60 % metanolekstrakt av Cistanches Herba

Fig. 3 Negativt TIC MS-kromatogram av 60 % metanolekstrakt av Cistanches Herba

2.7 Identifikasjon av HPLC-kromatogram av medisinske materialer

Under de samme betingelser (2,3 kromatografiske forhold og 2,4 massespektrometriske forhold) ble komponentene identifisert ved å sammenligne retensjonstiden og relativ molekylvekt til testprøven og kontrollprøven. Den spesifikke identifiseringsprosessen for kromatogramtoppen til testprøven (figur 1) er som følger.

2.7.1 Identifikasjon av kromatografisk topp 1

Retensjonstiden for kromatografisk topp 1 er 16,67 minutter. I positiv ionmodus er excimeriontoppen m/z365 gitt som [M+Na]+, mens i negativ ionmodus er excimeriontoppen m/z387 [M+COOH] - gitt. Den relative molekylvekten til topp 1 er bestemt til å være 342. Fragmentionet m/z179 er også gitt, som stammer fra tap av 1 molekyl glukose, 163 D, på grunn av spaltningen av glykosidbindingen. I henhold til retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansesubstansen, ble kromatografisk topp 1 identifisert som koniferin.

2.7.2 Identifikasjon av kromatografisk topp 2

Retensjonstiden for kromatografisk topp 2 er 17,36 min. Under negativ ion-modus er excimerion-toppene m/z357 [M – H] -, 393 [M+Cl] - gitt, og den relative molekylvekten til topp 2 bestemmes til 358. Samtidig er fragmentionet m/z195 avledet fra tapet av 1 molekyl av glucose, duoglyceside, 16, binding til Daoglyceside, 16. bryte. Den kromatografiske toppen 2 ble identifisert som demetylsyringin i henhold til retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet.

2.7.3 Identifikasjon av kromatografisk topp 3

Retensjonstiden for kromatografisk topp 3 er 19,04 minutter, excimeriontoppen m/z395 [M+Na] er gitt i positiv ion-modus, og excimerion-toppen m/z417 [M+HCOO] - er gitt i negativ ion-modus, og den relative molekylvekten til toppen bestemmes ved 32-tiden. m/z209 er avledet fra tap av 1 molekyl glukose, 163 Da, på grunn av at glykosidbindingen brytes. Den kromatografiske toppen 3 ble identifisert som syringin i henhold til retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansesubstansen.

2.7.4 Identifikasjon av kromatografisk topp 4

Retensjonstiden for kromatografisk topp 4 er 27,66 min. Eksimeriontoppen m/z804 [M+NH4] er gitt i positiv ionemodus, og excimeriontoppen m/z785 [M–H] - er gitt i negativ ionemodus. Den relative molekylvekten til topp 4 er bestemt til å være 786. Samtidig er fragmentionet m/z623 avledet fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163 Da. Kombinert med retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 4 identifisert som echinacea.

2.7.5 Identifikasjon av kromatografisk topp 5

Retensjonstiden for kromatografisk topp 5 er 31,48 minutter, excimerion-toppen m/z818 [M+NH4 er gitt i positiv ion-modus, og excimer-ion-toppen m/z799 [M–H] - er gitt i negativ ion-modus, og den relative molekylvekten til toppen bestemmes til 5,0,0. m/z637 er avledet fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163Da. Ved å kombinere retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble det bekreftet at kromatografisk topp 5 var cistanche glykosid A.

Tabell 1 Molekylvekt og retensjonstid (tＲ) for 39 standardforbindelser

2.7.6 Identifikasjon av kromatografisk topp 6

Retensjonstiden for kromatografisk topp 6 er 34,17 min. To excimeriontopper m/z846642 [M+NH4] + er gitt i positiv ionemodus, og to excimeriontopper m/z827623 [M–H] - er også gitt i negativ ionemodus. Det er spekulert i at topp 6 kan inneholde to forbindelser med en relativ molekylvekt på 828624. Samtidig er fragmentionet m/z665461 avledet fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163 Da, og fragmentionet m/z622 som bryter acetylbindingen er avledet. Disse to forbindelsene ble isolert og kombinert med retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansesubstansen; den kromatografiske toppen 6 var en blanding av Cimicifugarin og antocyanin A.

2.7.7 Identifikasjon av kromatografisk topp 7

Retensjonstiden for kromatografisk topp 7 er 35,34 min. Eksimerion-toppen m/z832 [M+NH4]+, 837 [M+Na]+ er gitt i positiv ion-modus, og excimer-ion-toppen m/z813 [M–H] - er gitt i negativ ion-modus, og den relative molekylvekten til topp 7 er 814. Samtidig er m/z-fragmentet avledet fra 7, ester. bindingsbrytende tap av 1 molekyl ferulinsyre, 177Da. Kombinert med retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 7 identifisert som cistanche glykosid B.

2.7.8 Identifikasjon av kromatografisk topp 8

Retensjonstiden for kromatografisk topp 8 er 36,17 minutter, excimeriontoppen m/z647 [M+Na] er gitt i positiv ionmodus, og excimeriontoppen m/z623 [M–H] - er gitt i negativ ionmodus, og den relative molekylvekten til toppen bestemmes ved samme tidspunkt 624. m/z461 er gitt, som stammer fra esterbindingsbrudd og tap av 1 molekyl koffeingruppe, 163 Da. Kombinert med retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 8 identifisert som heterocoenosid.

2.7.9 Identifikasjon av kromatografisk topp 9

Retensjonstiden for kromatografisk topp 9 er 38,20 minutter. Eksimer-ion-toppene m/z860 [M+NH4]+, 865 [M+Na] er gitt i positiv ion-modus, og excimer-ion-toppene m/z841 [M–H] -, 877 [M+Cl] - er gitt i negativ ion-modus. Den relative molekylvekten til topp 9 er bestemt til å være 842. Samtidig er fragmentionet m/z679636 avledet fra det esterbindingsbrytende tapet av 1 molekyl koffein, 163 Da og 1 molekyl acetyl, 43 Da. Retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet er konsistente, og identifikasjonstoppen 9 er 2- 2'-acetylcistanche-glykosid A.

2.7.10 Identifikasjon av chromatografisk seak 10

Retensjonstiden for kromatografisk topp 10 er 39,04 min. Eksimeriontoppen m/z656 [M+NH4]+, 661 [M+Na] er gitt i positiv ionmodus, og excimeriontoppen m/z637 [M–H] -, 673 [M+Cl] - er gitt i negativ ionmodus. Den relative molekylvekten til topp 10 er bestemt til å være 638. Samtidig er fragmentionet m/z475 avledet fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163 Da. Retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet er konsistente, og identifikasjonstoppen 10 er Cistanche C.

2.7.11 Identifikasjon av kromatografisk topp 11

Retensjonstiden for kromatografisk topp 11 er 40,82 min. Eksimeriontoppen m/z661 [M+Na]+, 677 [M+K + er gitt i positiv ionmodus, og excimeriontoppen m/z637 [M–H] -, 673 [M+Cl] - er gitt i negativ ionmodus. Det kan bestemmes at den relative molekylvekten til topp 11 er 638. Samtidig er fragmentionet m/z475 avledet fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163 Da. Ved å kombinere retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 11 identifisert som isocistanche glykosid C.

2.7.12 Identifikasjon av kromatografisk topp 12

Retensjonstiden for kromatografisk topp 12 er 41,48 min. Eksimeriontoppen m/z684 [M+NH4]+, 689 [M+Na + er gitt i positiv ionemodus, og excimeriontoppen m/z665 [M–H] - er gitt i negativ ionemodus. Det kan fastslås at den relative molekylvekten til topp 12 er 666. Samtidig vises det at fragmentionet m/z503460 kommer fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163 Da, og 1 molekyl acetyl, 43 Da. I henhold til retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 12 identifisert som a2'-acetylylcoeliaosid.

Cistanche deserticola-eksperiment

2.7.13 Identifikasjon av kromatografisk topp 13

Retensjonstiden for kromatografisk topp 13 er 44,29 minutter, excimeriontoppen m/z689 [M+Na] er gitt i positiv ionmodus, og excimeriontoppen m/z665 [M–H] - er gitt i negativ ionmodus, og den relative molekylvekten til topp 6, fragment er vist at ved samme topp 6, fragment. m/z503460 kommer fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163 Da, og 1 molekyl acetyl, 43 Da. Kombinert med retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 13 identifisert som antocyanin B.

2.7.14 Identifikasjon av kromatografisk topp 14

Retensjonstiden for kromatografisk topp 14 er 46,67 min. Eksimeriontoppen m/z675 [M+Na] er gitt i positiv ionemodus, og excimeriontoppen m/z651 [M–H] - er gitt i negativ ionemodus. Den relative molekylvekten til topp 14 er 652. Samtidig er fragmentionet m/z475 avledet fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl ferulinsyregruppe, 177Da. Kombinert med retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 14 identifisert som epimeridinosid A.

2.7.15 Identifikasjon av kromatografisk topp 15

Retensjonstiden for kromatografisk topp 15 er 49,90 min. Eksimeriontoppen m/z698 [M+NH4]+, 703 [M+Na + er gitt i positiv ionmodus, og excimeriontoppen m/z679 [M–H] -, 715 [M+Cl] - er gitt i negativ ionmodus. Den relative molekylvekten til topp 15 er 680. Samtidig er fragmentionet m/z517474 avledet fra esterbindingsbrytende tap av 1 molekyl koffein, 163 Da, og 1 molekyl acetyl, 43 Da. Den kromatografiske toppen 15 ble identifisert som cistanche-glykosid K basert på retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansesubstansen.

2.7.16 Identifikasjon av kromatografisk topp 16

Retensjonstiden for kromatografisk topp 16 er 55,36 minutter. I positiv ion-modus er excimer-ion-toppen m/z717 [M+N gitt, mens i negativ ion-modus er excimer-ion-toppene m/z693 [M–H] -, 729 [M+Cl] - gitt, noe som resulterer i en relativ molekylvekt på 694 for topp 16. Samtidig vises 71z-delen 7,5 fra esterbindingen som bryter tap av 1 molekyl ferulsyregruppe, 177 Da, og 1 molekyl acetylgruppe, 43 Da. Kombinert med retensjonstiden og den relative molekylvekten til referansestoffet, ble kromatografisk topp 16 identifisert som cistanche glykosid J. De kromatografiske toppene av 60% metanolekstraktet av Cistanche deserticola ble identifisert ved HPLC-MS kombinert med den relative molekylvekten, retensjonstiden til den separate referansesubstansen og fragmentet. Resultatene viste at 17 komponenter av de 16 kromatografiske toppene ble nøyaktig identifisert (tabell 2).

Tabell 2: Identifiserte kromatografiske topper av Cistanches Herba og referansestandardforbindelser

3  . Diskusjon

3.1 Valg av testartikkelfremstillingsmetode

Hovedformålet med denne studien er å identifisere HPLC-toppene til Cistanche deserticola. Derfor er valg av ekstraksjonsløsningsmiddel og ekstraksjonsmetode basert på evnen til å oppnå flere HPLC-topper. Forskerteamet har utført langsiktig forskning på Cistanche deserticola og har gjort mye arbeid med kvalitetsanalyse. I denne artikkelen ble ekstraksjonsløsningsmidlet og ekstraksjonsmetoden til Cistanche deserticola også valgt basert på det tidligere analysearbeidet til forskningsgruppen og den kinesiske farmakopéen (2015-utgaven). Til slutt ble 60% metanol løsemiddel ultralydekstraksjon i 40 minutter valgt som ekstraksjonsmetode.

3.2 HPLC-MS tilstandsvalg

Valget av kromatografisk kolonne i denne artikkelen er basert på kvalitetsanalysen av Cistanche deserticola i den tidlige fasen av forskningsgruppen, og undersøkelsen av AgilentZORBAXEclipsePlusC18 (4,6 mm × 250 mm, 5 μ m), DionexC18(4,6 mm × 250 mm), (rmo. μ1 m), (rmo. μ1 m) 250mm,5 μ m) Kromatografikolonne, velg til slutt AgilentZORBAXEclipsePlusC18 kromatografikolonne (4,6mm × 250mm,5 μm) Den har god separasjonseffekt på Cistanche deserticola; De 39 referansestoffene inkluderer fenyletanoid, lignaner og fenylpropanoid, så deteksjonsbølgelengden er 254nm; Samtidig ble effekten av mobil fase som metanol-vann, acetonitril-vann, metanol-0,1 % fosforsyrevann, acetonitril-0,1 % maursyrevann på kromatografisk separasjon og massespektrometrideteksjon undersøkt, og acetonitril-0,1 % maursyrevann ble til slutt valgt som mobilfase.

3.3 Sammendrag

Metoden etablert i denne studien identifiserte nøyaktig 17 komponenter fra 16 kromatografiske topper av 60 % metanolekstraktavCistanche deserticola.

Forskningsresultatene har ikke bare en viss referanseverdi for den videre kvalitetsanalysen av det medisinske materialet, men kan også unngå noe repeterende arbeid med strukturidentifikasjonen av de kjente forbindelsene i det medisinske materialet. Generelt er det imidlertid relativt få identifiserte kromatografiske topper, og mange kromatografiske topper er ikke identifisert fordi de ikke har blitt tilordnet referansestoffet. De fleste identifiserte komponenter er fenyletanoidglykosider, mens lignaner er sjeldne. Dette kan skyldes at ekstraksjonsmetoden det refereres til i 2015-utgaven av den kinesiske farmakopéen hovedsakelig er rettet mot fenyletanoidglykosider, eller fordi innholdet av echinacosid og koliforme-lignende forbindelser i ekstraktet av dette legemiddelmaterialet er for høyt, noe som gjør det vanskelig å oppdage andre forbindelser med et lite innhold. De spesifikke årsakene må avklares ytterligere.

[Referanser]

[1] Redaksjonskomité for Flora of China. Flora of China [M]. Beijing: Science Press, 1990: 86

[2] Yang Junshan. Desert ginseng -- Cistanche deserticola [J]. Chinese Journal of Pharmacy, 2011,46( 12): 881.

[3] Tu Pengfei, Jiang Yong, Guo Yuhai, et al. Forskning på Cistanche deserticola og dens industrielle utvikling[J]. Chinese Journal of Pharmacy, 2011, 46 (12): 882-887

[4]Nasjonal farmakopékommisjon. Farmakopéen til Folkerepublikken Kina. Del I [M]Beijing: China Pharmaceutical Science and Technology Press, 2015: 135

[5] JIANG Y, TU PF. Analyse av kjemiske bestanddeler i Cistanche-arter ［J］. J Chromatogr A,2009,1216 ( 11): 1970-1979.

[6] PAN J,YUAN CS,LIN CJ, et al. Farmakologiske aktiviteter og mekanismer for naturlige fenylpropanoidglykosider (J. Pharmazie, 2003,58( 11): 767-775.

[7] FU GM, PANG HH, Wong Y. Naturlig forekommende fenyletanoidglykosider: potensielle ledetråder for nye terapier［J］． Curr Med Chem, 2008,15 ( 25): 2592-2613.

[8] Rhode Mei, Long Mei, Du Wenjing, et al. Mekanismen for anti-osteoporose-effekten av Cistanche deserticola-ekstrakt på M KOOPG-mus ［ J］. Kinesisk eksperiment Journal of Prescriptions, 2016, 22 (10): 138-142

[9] Ma Hui, Yin Ruoxi, Guo Min, et al. Effekt av Cistanche deserticola polysakkarid på D-galaktose-indusert aldring. Effekt av CREB-uttrykk i gamle modellmus ［ J］. Chinese Experimental Prescriptions Journal, 2014, 20 (20): 137-141

[10] Tao Yicun, Li Jianying, Xu Yonghua, et al. Effekter av fenyletanosid av Cistanche deserticola på rotter: Forebygging og behandling av lungeødem i høy høyde ［ J］. Chinese Journal of Experimental Prescriptions, 2014,20( 15): 134-138．

[11] Zhou Haitao, Cao Jianmin, Lin Qiang. Cistanche deserticola om den utmattede svømmeevnen til rotter og myokardial mitokondriell antioksidantkapasitet ［ J］. Kinesisk eksperimentell formel Journal of Science, 2012, 18 (6): 229-233

[12] NAN ZD, ZHAO MB, ZENG KW, et al. Anti-inflammatoriske iridoider fra stilkene til Cistanche deserticola dyrket i Tarim-ørkenen ［J］． Chin J Nat Med,2016,14( 1): 61-65．

[13] NAN ZD,ZENG KW,SHI SP, et al. Fenyletanoidglykosider med anti-inflammatorisk aktivitet fra stilkene til Cistanche deserticola dyrket i Tarim-ørkenen ［J］． Fitoterapia, 2013,89: 167-174.

[14] Nan Zedong, Zhao Mingbo, Jiang Yong, et al. Kjemi av ørkencistanche dyrket i Tazhong: Sammensetningsstudie ［ J ］. Chinese Journal of Traditional Chinese Medicine, 2013, 38 (16):2665-2670.

[15] Nan Zedong, Zhao Mingbo, Jiang Yong, et al. Lignans [J]. Chinese Journal of Traditional Chinese Medicine, 2015, 40 (3):463-468.