Kostholdsanti-aldringspolyfenoler og potensielle mekanismer del 3
Aug 01, 2023
Referanse forts.
Glykosid av cistanche kan også øke aktiviteten til SOD i hjerte- og levervev, og redusere innholdet av lipofuscin og MDA i hvert vev betydelig, effektivt rense ulike reaktive oksygenradikaler (OH-, H₂O₂, etc.) og beskytte mot DNA-skader forårsaket av OH-radikaler. Cistanche-fenyletanoidglykosider har en sterk renseevne for frie radikaler, en høyere reduserende evne enn vitamin C, forbedrer aktiviteten til SOD i sædsuspensjon, reduserer innholdet av MDA og har en viss beskyttende effekt på sædmembranfunksjonen. Cistanche-polysakkarider kan øke aktiviteten til SOD og GSH-Px i erytrocytter og lungevev hos eksperimentelt senescent mus forårsaket av D-galaktose, samt redusere innholdet av MDA og kollagen i lunge og plasma, og øke innholdet av elastin, har en god rensende effekt på DPPH, forlenger hypoksitiden hos eldre mus, forbedrer aktiviteten til SOD i serum og forsinker den fysiologiske degenerasjonen av lunge hos eksperimentelt eldre mus. Med cellulær morfologisk degenerasjon har eksperimenter vist at Cistanche har den gode antioksidantevnen og har potensial til å være et medikament for å forebygge og behandle aldringssykdommer. Samtidig har echinacoside i Cistanche en betydelig evne til å rense DPPH-frie radikaler og har evnen til å rense reaktive oksygenarter og forhindre frie radikal-indusert kollagen-nedbrytning, og har også en god reparasjonseffekt på anionskader av tymin frie radikaler.
Klikk på Anti-Aging Cistanche Portugal
【For mer informasjon:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:8613632399501】
27. Bayard, V.; Chamorro, F.; Motta, J.; Hollenberg, Nk Påvirker flavanolinntak dødelighet fra nitrogenoksidavhengige prosesser? Iskemisk hjertesykdom, hjerneslag, diabetes mellitus og kreft i Panama. Int. J. Med. Sci. 2007, 4, 53–58. [CrossRef] [PubMed]
28. Hollenberg, NK; Martinez, G.; McCullough, M.; Meinking, T.; Passan, D.; Preston, M.; Rivera, A.; Taplin, D.; Vicaria-Clement, M. Aldring, akkulturasjon, saltinntak og hypertensjon i Kuna i Panama. Hypertensjon 1997, 29, 171–176. [CrossRef]
29. Hollenberg, NK; Naomi, F. Er det mørkt i mørk sjokolade? Opplag 2007, 116, 2360–2362. [CrossRef]
30. Kirschbaum, J. Effekt på menneskelig levetid av tilsatt diettsjokolade. Nutrition 1998, 14, 869. [CrossRef]
31. Holt, RR; Lazarus, SA; Sullards, MC; Zhu, QY; Schramm, DD; Hammerstone, JF; Fraga, CG; Schmitz, HH; Keen, CL Procyanidin dimer B2 [epicatechin-(4beta-8)-epicatechin] i humant plasma etter inntak av flavanolrik kakao. Er. J. Clin. Nutr. 2002, 76, 798–804. [CrossRef]
32. Martinez-Gonzalez, MA; Martin-Calvo, N. Middelhavskosthold og forventet levealder; utover olivenolje, frukt og grønnsaker. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Omsorg 2016, 19, 401–407. [CrossRef]
33. Menotti, A.; Puddu, PE; Maiani, G.; Catasta, G. Kardiovaskulære og andre dødsårsaker som en funksjon av livsstilsvaner i en kvasi-utdødd middelaldrende mannlig befolkning. En 50-års oppfølgingsstudie. Int. J. Cardiol 2016, 210, 173–178. [CrossRef]
34. Bellavia, A.; Tektonidis, TG; Orsini, N.; Wolk, A.; Larsson, SC Kvantifisere fordelene med middelhavsdietten når det gjelder overlevelse. Eur. J. Epidemiol. 2016, 31, 527–530. [CrossRef] [PubMed]
35. Harmon, BE; Boushey, CJ; Shvetsov, YB; Ettienne, R.; Reedy, J.; Wilkens, LR; Le Marchand, L.; Henderson, BE; Kolonel, LN Sammenslutninger av viktige kostholdskvalitetsindekser med dødelighet i den multietniske kohorten: Dietary Patterns Methods Project. Er. J. Clin. Nutr. 2015, 101, 587–597. [CrossRef] [PubMed]
36. Leri, M.; Scuto, M.; Ontario, ML; Calabrese, V.; Calabrese, EJ; Bucciantini, M.; Stefani, M. sunne effekter av plantepolyfenoler: molekylære mekanismer. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 1250. [CrossRef] [PubMed]
37. Ahamad, J.; Toufeeq, I.; Khan, MA; Ameen, MSM; Anwer, ET; Uthirapathy, S.; Mir, SR; Ahmad, J. Oleuropein: Et naturlig antioksidantmolekyl i behandlingen av metabolsk syndrom. Phytother. Res. 2019, 33, 3112–3128. [CrossRef]
38. Pitozzi, V.; Jacomelli, M.; Catelan, D.; Servili, M.; Taticchi, A.; Biggeri, A.; Dolara, P.; Giovannelli, L. Langsiktig diett ekstra virgin olivenolje rik på polyfenoler reverserer aldersrelaterte dysfunksjoner i motorisk koordinasjon og kontekstuelt minne hos mus: Rolle av oksidativt stress. Rejuvenation Res. 2012, 15, 601–612. [CrossRef] [PubMed]
39. Bayram, B.; Ozcelik, B.; Grimm, S.; Roeder, T.; Schrader, C.; Ernst, IM; Wagner, AE; Grune, T.; Frank, J.; Rimbach, G. En diett rik på olivenoljefenoler reduserer oksidativt stress i hjertet av SAMP8-mus ved induksjon av Nrf2-avhengig genuttrykk. Rejuvenation Res. 2012, 15, 71–81. [CrossRef]
40. Lauretti, E.; Iuliano, L.; Pratico, D. Ekstra virgin olivenolje forbedrer kognisjon og nevropatologi til 3xTg-musene: Rollen til autofagi. Ann. Clin. Overs. Neurol. 2017, 4, 564–574. [CrossRef]
41. De La Cruz, JP; Del Rio, S.; Arrebola, MM; Lopez-Villodres, JA; Jebrouni, N.; Gonzalez-Correa, JA Effekt av virgin olivenolje pluss acetylsalisylsyre på hjerneskiverskader etter hypoksi-reoksygenering hos rotter med type 1-som diabetes mellitus. Neurosci. Lett. 2010, 471, 89–93. [CrossRef]
42. Giovannelli, L. Gunstige effekter av olivenoljefenoler på aldringsprosessen: Eksperimentelle bevis og mulige virkningsmekanismer. Nutr. Aldring 2012, 1, 207–223. [CrossRef]
43. Serreli, G.; Deiana, M. Extra Virgin Olive Oil Polyphenols: Modulation of Cellular Pathways Relatert til oksidantarter og betennelse ved aldring. Cells 2020, 9, 478. [CrossRef]
44. Dilberger, B.; Passon, M.; Asseburg, H.; Silaidos, CV; Schmitt, F.; Schmiedl, T.; Schieber, A.; Eckert, GP Polyfenoler og metabolitter forbedrer overlevelsen hos gnagere og nematoder – påvirkning av mitokondrier. Næringsstoffer 2019, 11, 1886. [CrossRef]
45. Authority, EFS Scientific Opinion om underbyggelse av helsepåstander knyttet til polyfenoler i oliven og beskyttelse. EFSA J. 2011, 9, 2033.
46. Saxena, S.; Caroni, P. Selektiv nevronal sårbarhet i nevrodegenerative sykdommer: Fra stressorterskler til degenerasjon. Neuron 2011, 71, 35–48. [CrossRef]
47. Kennedy, BK; Berger, SL; Brunet, A.; Campisi, J.; Cuervo, AM; Epel, ES; Franceschi, C.; Lithgow, GJ; Morimoto, RI; Pessin, JE; et al. Gerovitenskap: Knytter aldring til kronisk sykdom. Cell 2014, 159, 709–713. [CrossRef] [PubMed]
48. Wang, JC; Bennett, M. Aldring og åreforkalkning: Mekanismer, funksjonelle konsekvenser og potensielle terapier for cellulær senescens. Circ. Res. 2012, 111, 245–259. [CrossRef] [PubMed]
49. Barnham, KJ; Masters, CL; Bush, AI Nevrodegenerative sykdommer og oksidativt stress. Nat. Rev. Drug Discov. 2004, 3, 205–214. [CrossRef]
50. Singh, A.; Kukreti, R.; Saso, L.; Kukreti, S. Oksidativt stress: En nøkkelmodulator i nevrodegenerative sykdommer. Molecules 2019, 24, 1583. [CrossRef]
51. Bordoni, L.; Gabbianelli, R. Mitokondriell DNA og nevrodegenerasjon: Enhver rolle for diettantioksidanter? Antioksidanter 2020, 9, 764. [CrossRef]
52. Scalbert, A.; Manach, C.; Morand, C.; Remesy, C.; Jimenez, L. Kostholdspolyfenoler og forebygging av sykdommer. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2005, 45, 287–306. [CrossRef] [PubMed]
53. Bhullar, KS; Rupasinghe, HP Polyfenoler: Multipotente terapeutiske midler ved nevrodegenerative sykdommer. Oksidativ Med. Celle. Longev. 2013, 2013, 891748. [CrossRef]
54. Farzaei, MH; Tewari, D.; Momtaz, S.; Argüelles, S.; Nabavi, SM Målrettet mot ERK-signalvei av polyfenoler som en ny terapeutisk strategi for nevrodegenerasjon. Food Chem. Toxicol. Int. J. Publ. Br. Ind. Biol. Res. Assoc. 2018, 120, 183–195. [CrossRef] [PubMed]
55. Farzaei, MH; Bahramsoltani, R.; Abbasabadi, Z.; Braidy, N.; Nabavi, SM Rollen til katekiner i grønn te i forebygging av aldersrelatert kognitiv nedgang: farmakologiske mål og klinisk perspektiv. J. Cell. Physiol. 2019, 234, 2447–2459. [CrossRef] [PubMed]
56. Arbo, BD; André-Miral, C.; Nasre-Nasser, RG; Schimith, LE; Santos, MG; Costa-Silva, D.; Muccillo-Baisch, AL; Hort, MA Resveratrol-derivater som potensielle behandlinger for Alzheimers og Parkinsons sykdom. Front. Aldrende Neurosci. 2020, 12, 103. [CrossRef]
57. Giuliano, C.; Cerri, S.; Blandini, F. Potensielle terapeutiske effekter av polyfenoler i Parkinsons sykdom: In vivo og in vitro prekliniske studier. Nevral Regen. Res. 2021, 16, 234–241. [CrossRef] [PubMed]
58. Malar, DS; Prasanth, MI; Brimson, JM; Sharika, R.; Sivamaruthi, BS; Chaiyasut, C.; Tencomnao, T. Nevrobeskyttende egenskaper ved grønn te (Camellia sinensis) ved Parkinsons sykdom: En gjennomgang. Molecules 2020, 25, 3926. [CrossRef]
59. Elejalde, E.; Villarán, MC; Alonso, RM Druepolyfenoltilskudd for treningsindusert oksidativt stress. J. Int. Soc. Sports Nutr. 2021, 18, 3. [CrossRef]
60. Tikhonova, MA; Tikhonova, NG; Tenditnik, MV; Ovsyukova, MV; Akopyan, AA; Dubrovina, NI; Amstislavskaya, TG; Khlestkina, EK Effekter av druepolyfenoler på levetiden og nevroinflammatoriske endringer relatert til nevrodegenerative Parkinsons sykdomslignende forstyrrelser hos mus. Molecules 2020, 25, 5339. [CrossRef]
61. Sharma, D.; Sethi, P.; Hussain, E.; Singh, R. Curcumin motvirker de aluminium-induserte aldringsrelaterte endringene i oksidativt stress, Na pluss , K pluss ATPase og proteinkinase C i voksne og gamle rottehjerneregioner. Biogerontology 2009, 10, 489–502. [CrossRef]
62. Bitu Pinto, N.; da Silva Alexandre, B.; Neves, KR; Silva, AH; Leal, LK; Viana, GS Neuroprotective Properties of the Standardized Extract from Camellia sinensis (Green Tea) and Its Main Bioactive Components, Epicatechin and Epigallocatechin Gallate, i 6-OHDA-modellen for Parkinsons sykdom. Evid. Basert komplementær alternativ. Med. eCAM 2015, 2015, 161092. [CrossRef] [PubMed]
63. Iwata, K.; Wu, Q.; Ferdousi, F.; Sasaki, K.; Tominaga, K.; Uchida, H.; Arai, Y.; Szele, FG; Isoda, H. Sukkerrør (Saccharum officinarum L.) Toppekstrakt forbedrer kognitiv nedgang i alderdomsmodell SAMP8 Mus: Modulering av nevral utvikling og energimetabolisme. Front. Cell Dev. Biol. 2020, 8, 573487. [CrossRef] [PubMed]
64. Sasaki, K.; Davies, J.; Doldán, NG; Arao, S.; Ferdousi, F.; Szele, FG; Isoda, H. 3,4,5-Tricaffeoylquinic acid induserer nevrogenese hos voksne og forbedrer lærings- og hukommelsessvikt hos aldringsmodeller av aldersakselerert utsatt 8 mus. Aldring 2019, 11, 401–422. [CrossRef]
65. Liang, Z.; Zhang, B.; Su, WW; Williams, PG; Li, QX C-glykosylflavoner lindrer Tau-fosforylering og amyloidnevrotoksisitet gjennom GSK3-hemming. ACS Chem. Neurosci. 2016, 7, 912–923. [CrossRef] [PubMed]
66. Dludla, PV; Joubert, E.; Muller, CJF; Louw, J.; Johnson, R. Hyperglykemi-indusert oksidativt stress og hjertesykdom kardiobeskyttende effekter av rooibos-flavonoider og fenylpyrodruesyre-2-O-beta-D-glukosid. Nutr. Metab. 2017, 14, 45. [CrossRef]
67. Ziqubu, K.; Dludla, PV; Joubert, E.; Muller, CJF; Louw, J.; Tiano, L.; Nkambule, BB; Kappo, AP; Mazibuko-Mbeje, SE Isoorientin: En diettflavon med potensial til å lindre forskjellige metabolske komplikasjoner. Pharmacol. Res. 2020, 158, 104867. [CrossRef]
68. Jesus, CCM; Araújo, MH; Simão, T.; Lasunskaia, EB; Barth, T.; Muzitano, MF; Pinto, SC Naturlige produkter fra Vitex polygami og deres antimykobakterielle og anti-inflammatoriske aktivitet. Nat. Prod. Res. 2020, 1–5. [CrossRef]
69. Ma, L.; Zhang, B.; Liu, J.; Qiao, C.; Liu, Y.; Li, S.; Lv, H. Isoorientin utøver en beskyttende effekt mot 6-OHDA-indusert nevrotoksisitet ved å aktivere AMPK/AKT/Nrf2-signalveien. Matfunksjon. 2020, 11, 10774–10785. [CrossRef]
70. Grewal, R.; Reutzel, M.; Dilberger, B.; Hein, H.; Zotzel, J.; Marx, S.; Tretzel, J.; Sarafeddinov, A.; Fuchs, C.; Eckert, GP Renset oleocanthal og ligstroside beskytter mot mitokondriell dysfunksjon i modeller for tidlig Alzheimers sykdom og hjernealdring. Exp. Neurol. 2020, 328, 113248. [CrossRef]
71. Schaffer, S.; Müller, WE; Eckert, GP Cytobeskyttende effekter av olivenmølle-avløpsvannekstrakt og dets hovedbestanddel hydroksytyrosol i PC12-celler. Pharmacol. Res. 2010, 62, 322–327. [CrossRef]
72. Schaffer, S.; Podstawa, M.; Visioli, F.; Bogani, P.; Müller, WE; Eckert, GP Hydroxytyrosol-rik olivenmølle avløpsvannekstrakt beskytter hjerneceller in vitro og ex vivo. J. Agric. Food Chem. 2007, 55, 5043–5049. [CrossRef] [PubMed]
73. Ötzkan, S.; Muller, WE; Wood, WG; Eckert, GP Effekter av 7, 8-Dihydroksyflavon på lipidisoprenoid- og Rho-proteinnivåer i hjerner til gamle C57BL/6-mus. NeuroMol. Med. 2020, 1–10. [CrossRef]
74. Fitzenberger, E.; Deusing, DJ; Marx, C.; Boll, M.; Lüersen, K.; Wenzel, U. Polyfenol quercetin beskytter mev-1-mutanten av Caenorhabditis elegans fra glukose-indusert reduksjon av overlevelse under varmestress avhengig av SIR-2.1, DAF-12 og proteasomal aktivitet. Mol. Nutr. Mat Res. 2014, 58, 984–994. [CrossRef]
75. Phiel, CJ; Wilson, CA; Lee, VMY; Klein, PS GSK-3 regulerer produksjonen av amyloidpeptider ved Alzheimers sykdom. Nature 2003, 423, 435–439. [CrossRef]
76. Kolarova, M.; Garcia-Sierra, F.; Bartos, A.; Ricny, J.; Ripova, D. Struktur og patologi av tau-protein ved Alzheimers sykdom. Int. J. Alzheimers Dis. 2012, 2012, 731526. [CrossRef]
77. Qin, XY; Cheng, Y.; Yu, LC Potensiell beskyttelse av grønn te-polyfenoler mot intracellulær amyloid beta-indusert toksisitet på primære dyrkede prefrontale kortikale nevroner hos rotter. Neurosci. Lett. 2012, 513, 170–173. [CrossRef]
78. Czachor, J.; Miłek, M.; Galiniak, S.; St ˛epie ´n, K.; D˙zugan, M.; Moło ´n, M. Kaffe forlenger gjærens kronologiske levetid gjennom antioksidantegenskaper. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 9510. [CrossRef]
79. Cho, B.-H.; Choi, S.-M.; Kim, J.-T.; Kim, BC Association of kaffeforbruk og ikke-motoriske symptomer ved medikamentnaive, tidlige stadier av Parkinsons sykdom. Parkinsonisme relatert. Uorden. 2018, 50, 42–47. [CrossRef]
80. Socała, K.; Szopa, A.; Serefko, A.; Poleszak, E.; Wla'z, P. Nevrobeskyttende effekter av kaffebioaktive forbindelser: en gjennomgang. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 107. [CrossRef]
81. Gao, L.; Li, X.; Meng, S.; Ma, T.; Wan, L.; Xu, S. Chlorogenic Acid lindrer en (25-35)-indusert autofagi og kognitiv svekkelse via mTOR/TFEB-signalveien. Drug Des. Dev. Ther. 2020, 14, 1705–1716. [CrossRef] [PubMed]
82. Wang, J.; Ferruzzi, MG; Ho, L.; Blount, J.; Janle, EM; Gong, B.; Pan, Y.; Gowda, GA; Raftery, D.; Arrieta-Cruz, I.; et al. Hjernemålrettede proanthocyanidin-metabolitter for behandling av Alzheimers sykdom. J. Neurosci. 2012, 32, 5144–5150. [CrossRef]
83. Sutherland, BA; Rahman, RM; Appleton, I. Virkningsmekanismer for katekiner av grønn te, med fokus på iskemi-indusert nevrodegenerasjon. J. Nutr. Biochem. 2006, 17, 291–306. [CrossRef] [PubMed]
84. Gadkari, PV; Balaraman, M. Catechins: Kilder, ekstraksjon og innkapsling: En gjennomgang. Mat Bioprod. Prosess. 2015, 93, 122–138. [CrossRef]
85. Li, Q.; Zhao, HF; Zhang, ZF; Liu, ZG; Pei, XR; Wang, JB; Li, Y. Langsiktig administrasjon av grønn te-katechin forhindrer romlig læring og hukommelsessvekkelse hos mus som er utsatt for senescensakselerert-8 mus ved å redusere Abeta1-42-oligomerer og oppregulere synaptiske plastisitetsrelaterte proteiner i hippocampus. Nevrovitenskap 2009, 163, 741–749. [CrossRef]
86. Pallauf, K.; Rimbach, G.; Rupp, PM; Chin, D.; Wolf, IM Resveratrol og levetid i modellorganismer. Curr. Med. Chem. 2016, 23, 4639–4680. [CrossRef]
87. Du, LL; Xie, JZ; Cheng, XS; Li, XH; Kong, FL; Jiang, X.; Ma, ZW; Wang, JZ; Chen, C.; Zhou, XW Aktivering av sirtuin 1 demper cerebral ventrikulær streptozotocin-indusert tau-hyperfosforylering og kognitive skader i rotte-hippocampi. Alder 2014, 36, 613–623. [CrossRef] [PubMed]
88. Franceschi, C.; Capri, M.; Monti, D.; Giunta, S.; Olivieri, F.; Sevini, F.; Panourgia, MP; Invidia, L.; Celani, L.; Scurti, M.; et al. Betennende og betennelsesdempende: Et systemisk perspektiv på aldring og lang levetid dukket opp fra studier på mennesker. Mech. Aging Dev. 2007, 128, 92–105. [CrossRef] [PubMed]
89. Moussa, C.; Hebron, M.; Huang, X.; Ahn, J.; Rissman, RA; Aisen, PS; Turner, RS Resveratrol regulerer nevrobetennelse og induserer adaptiv immunitet ved Alzheimers sykdom. J. Neuroinflamm. 2017, 14, 1. [CrossRef] [PubMed]
90. Clavijo, PE; Frauwirth, KA Anergic CD8 pluss T-lymfocytter har svekket NF-KB-aktivering med defekter i p65-fosforylering og acetylering. J. Immunol. 2012, 188, 1213–1221. [CrossRef]
91. Niu, Y.; Na, L.; Feng, R.; Gong, L.; Zhao, Y.; Li, Q.; Li, Y.; Sun, C. Fytokjemikaliet, EGCG, forlenger levetiden ved å redusere lever- og nyrefunksjonsskader og forbedre aldersassosiert betennelse og oksidativt stress hos friske rotter. Aldringscelle 2013, 12, 1041–1049. [CrossRef] [PubMed]
92. Kuptniratsaikul, V.; Thanakhumtorn, S.; Chinswangwatanakul, P.; Wattanamongkonsil, L.; Thamlikitkul, V. Effekt og sikkerhet av Curcuma domestica-ekstrakter hos pasienter med kneartrose. J. Altern. Komplementær Med. 2009, 15, 891–897. [CrossRef]
93. De Araújo, FF; de Paulo Farias, D.; Neri-Numa, IA; Pastore, GM Polyfenoler og deres anvendelser: En tilnærming innen matkjemi og innovasjonspotensial. Food Chem. 2020, 338, 127535. [CrossRef]
94. Heinz, SA; Henson, DA; Austin, MD; Jin, F.; Nieman, DC Quercetintilskudd og øvre luftveisinfeksjon: En randomisert klinisk studie i samfunnet. Pharmacol. Res. 2010, 62, 237–242. [CrossRef]
95. Yuan, L.; Han, X.; Li, W.; Ren, D.; Yang, X. Isoorientin forhindrer hyperlipidemi og leverskade ved å regulere lipidmetabolisme, antioksidantevne og inflammatorisk cytokinfrigjøring hos mus med høy fruktose. J. Agric. Food Chem. 2016, 64, 2682–2689. [CrossRef]
96. Zhang, L.; Wang, X.; Zhang, L.; Virgous, C.; Si, H. Kombinasjon av curcumin og luteolin hemmer synergistisk TNF-alfa-indusert vaskulær betennelse i menneskelige vaskulære celler og mus. J. Nutr. Biochem. 2019, 73, 108222. [CrossRef] [PubMed]
97. Harman, D. Den biologiske klokken: Mitokondriene? J. Am. Geriatr. Soc. 1972, 20, 145–147. [CrossRef] [PubMed]
98. Linnane, AW; Marzuki, S.; Ozawa, T.; Tanaka, M. Mitokondrielle DNA-mutasjoner som en viktig bidragsyter til aldring og degenerative sykdommer. Lancet 1989, 1, 642–645. [CrossRef]
99. Nenadis, N.; Wang, LF; Tsimidou, M.; Zhang, HY Estimering av renseaktiviteten til fenoliske forbindelser ved bruk av ABTS(* plus )-analysen. J. Agric. Food Chem. 2004, 52, 4669–4674. [CrossRef]
100. Lu, M.; Cai, YJ; Fang, JG; Zhou, YL; Liu, ZL; Wu, LM Effektivitet og struktur-aktivitetsforhold til antioksidantvirkningen til resveratrol og dets analoger. Pharmazie 2002, 57, 474–478. [PubMed]
101. Yokozawa, T.; Chen, CP; Dong, E.; Tanaka, T.; Nonaka, GI; Nishioka, I. Studie på den hemmende effekten av tanniner og flavonoider mot 1,1-difenyl-2 pikrylhydrazylradikalet. Biochem. Pharmacol. 1998, 56, 213–222. [CrossRef]
102. Cao, G.; Sofic, E.; Tidligere, RL Antioksidant og prooksidant oppførsel av flavonoider: Struktur-aktivitetsforhold. Free Radic. Biol. Med. 1997, 22, 749–760. [CrossRef]
103. Wolfe, KL; Liu, RH Struktur-aktivitetsforhold av flavonoider i den cellulære antioksidantaktivitetsanalysen. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 8404–8411. [CrossRef] [PubMed]
104. Modak, B.; Contreras, ML; Gonzalez-Nilo, F.; Torres, R. Struktur-antioksidantaktivitetsforhold til flavonoider isolert fra harpikseksudatet til Heliotropium sinuatum. Bioorg Med. Chem. Lett. 2005, 15, 309–312. [CrossRef] [PubMed]
105. Kato, A.; Nasu, N.; Takebayashi, K.; Adachi, I.; Minami, Y.; Sanae, F.; Asano, N.; Watson, AA; Nash, RJ Struktur-aktivitetsforhold av flavonoider som potensielle hemmere av glykogenfosforylase. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 4469–4473. [CrossRef]
106. Lin, CZ; Zhu, CC; Nynne.; Wu, AZ; Bairu, ZD; Kangsa, SQ Struktur-aktivitetsforhold av antioksidantaktivitet in vitro om flavonoider isolert fra Pyrethrum tatsienense. J. Intercult. Etnopharmacol. 2014, 3, 123–127. [CrossRef] [PubMed]
107. Asseburg, H.; Schäfer, C.; Müller, M.; Hagl, S.; Pohland, M.; Berressem, D.; Borchiellini, M.; Plank, C.; Eckert, GP Effekter av drueskallekstrakt på aldersrelatert mitokondriell dysfunksjon, hukommelse og levetid hos C57BL/6J-mus. Neuromol. Med. 2016, 18, 378–395. [CrossRef]
108. Singh, S.; Das Roy, L.; Giri, S. Curcumin beskytter metronidazol og røntgenindusert cytotoksisitet og oksidativt stress i hannkjønnsceller hos mus. Praha Med. Rep. 2015, 114, 92–102. [CrossRef]
109. Roy, S.; Sannigrahi, S.; Vaddepalli, RP; Ghosh, B.; Pusp, P. En ny kombinasjon av metotreksat og epigallokatekin demper overekspresjonen av pro-inflammatoriske bruskcytokiner og modulerer antioksidantstatus hos adjuvante artrittrotter. Inflammasjon 2015, 35, 1435–1447. [CrossRef]
110. Uygur, R.; Yagmurca, M.; Alkoc, OA; Genc, A.; Songur, A.; Ucok, K.; Ozen, OA Effekter av quercetin og fisk n-3 fettsyrer på testikkelskade indusert av etanol hos rotter. Andrologia 2013. [CrossRef]
111. Yang, Y.; Wu, ZZ; Cheng, YL; Lin, W.; Qu, C. Resveratrol beskytter mot oksidativ skade av retinale pigmentepitelceller ved å modulere SOD/MDA-aktivitet og aktivere Bcl-2-ekspresjon. Eur. Rev. Med. Pharmacol Sci. 2019, 23, 378–388. [CrossRef] [PubMed]
112. Zheng, Y.; Liu, Y.; Ge, J.; Wang, X.; Liu, L.; Bu, Z.; Liu, P. Resveratrol beskytter humane linseepitelceller mot H2O2 -indusert oksidativt stress ved å øke katalase-, SOD-1- og HO-1-ekspresjonen. Mol. Vis. 2010, 16, 1467–1474.
113. Yang, XH; Li, L.; Xue, YB; Zhou, XX; Tang, JH Flavonoider fra Epimedium pubescent: Ekstraksjon og mekanisme, antioksidantkapasitet og effekter på CAT og GSH-Px av Drosophila melanogaster. Peer J. 2020, 8, e8361. [CrossRef] [PubMed]
114. Sun, S.; Zhao, X.; Zhao, L. [Effekter av genistein på NOS, GSH-Px aktiviteter og NO, GSH, MDA innhold i MCF humane brystkreftceller]. Wei Sheng Yan Jiu 2004, 33, 468–469. [PubMed]
115. Lorendeau, D.; Dury, L.; Genoux-Bastide, E.; Lecerf-Schmidt, F.; Simoes-Pires, C.; Carrupt, PA; Terreux, R.; Magnard, S.; Di Pietro, A.; Boumendjel, A.; et al. Kollateral følsomhet for resistente MRP1-overuttrykkende celler overfor flavonoider og derivater gjennom GSH-utstrømning. Biochem. Pharmacol. 2014, 90, 235–245. [CrossRef]
116. Kobayashi, M.; Yamamoto, M. Molekulære mekanismer som aktiverer Nrf2-Keap1-veien for antioksidantgenregulering. Antioksid. Redokssignal. 2005, 7, 385–394. [CrossRef] [PubMed]
117. Wu, CC; Hsu, MC; Hsieh, CW; Lin, JB; Lai, PH; Wung, BS Oppregulering av hem oksygenase-1 av Epigallocatechin-3-gallate via fosfatidylinositol 3-kinase/Akt- og ERK-veiene. Life Sci. 2006, 78, 2889–2897. [CrossRef]
118. Wruck, CJ; Claussen, M.; Fuhrmann, G.; Romer, L.; Schulz, A.; Pufe, T.; Waetzig, V.; Peipp, M.; Herdegen, T.; Gotz, ME Luteolin beskytter rotte PC12- og C6-celler mot MPP pluss indusert toksisitet via en ERK-avhengig Keap1-Nrf2-ARE-vei. J. Neural Transm. Suppl. 2007. [CrossRef]
119. Rushworth, SA; Ogborne, RM; Charalambos, CA; O'Connell, MA Rollen til proteinkinase C delta i curcumin-indusert antioksidantrespons element-mediert genuttrykk i humane monocytter. Biochem. Biofys. Res. Commun. 2006, 341, 1007–1016. [CrossRef] [PubMed]
120. Shah, ZA; Li, RC; Ahmad, AS; Kensler, TW; Yamamoto, M.; Biswal, S.; Dore, S. Flavanol (-)-epicatechin forhindrer slagskade gjennom Nrf2/HO1-banen. J. Cereb Blood Flow Metab 2010, 30, 1951–1961. [CrossRef]
121. Hsieh, TC; Lu, X.; Wang, Z.; Wu, JM Induksjon av kinonreduktase NQO1 av resveratrol i humane K562-celler involverer antioksidantresponselementet ARE og er ledsaget av nukleær translokasjon av transkripsjonsfaktor Nrf2. Med. Chem. 2006, 2, 275–285. [CrossRef] [PubMed]
122. Kim, JY; Park, YK; Lee, KP; Lee, SM; Kang, TW; Kim, HJ; Dho, SH; Kim, SY; Kwon, KS Genomomfattende profilering av det regulatoriske mikroRNA-mRNA-nettverket i skjelettmuskulatur med aldring. Aldring 2014, 6, 524–544. [CrossRef]
123. Milenkovic, D.; Deval, C.; Gouranton, E.; Landrier, JF; Scalbert, A.; Morand, C.; Mazur, A. Modulering av miRNA-ekspresjon av diettpolyfenoler i apoE-mangelfulle mus: En ny mekanisme for virkningen av polyfenoler. PLoS ONE 2012, 7, e29837. [CrossRef]
124. Gandhy, SU; Kim, K.; Larsen, L.; Rosengren, RJ; Safe, S. Curcumin og syntetiske analoger induserer reaktive oksygenarter og reduserer spesifisitetsprotein (Sp) transkripsjonsfaktorer ved å målrette mikroRNA. BMC Cancer 2012, 12, 564. [CrossRef] [PubMed]
125. Boesch-Saadatmandi, C.; Wagner, AE; Wolffram, S.; Rimbach, G. Effekt av quercetin på inflammatorisk genekspresjon i mus lever in vivo - Rollen til redoksfaktor 1, miRNA-122 og miRNA-125b. Pharmacol. Res. 2012, 65, 523–530. [CrossRef] [PubMed]
126. Angkeow, P.; Deshpande, SS; Qi, B.; Liu, YX; Park, YC; Jeon, BH; Ozaki, M.; Irani, K. Redoksfaktor-1: En ekstranukleær rolle i reguleringen av endotelialt oksidativt stress og apoptose. Celledød er forskjellig. 2002, 9, 717–725. [CrossRef]
127. Barzegar, A.; Moosavi-Movahedi, AA Intracellulær ROS-beskyttelseseffektivitet og frie radikaler-fjernende aktivitet av curcumin. PLoS ONE 2011, 6, e26012. [CrossRef] [PubMed]
128. Milenkovic, D.; Jude, B.; Morand, C. miRNA som et molekylært mål for polyfenoler som ligger til grunn for deres biologiske effekter. Free Radic Biol. Med. 2013, 64, 40–51. [CrossRef]
129. Vina, J.; Borras, C.; Miquel, J. Teorier om aldring. IUBMB Life 2007, 59, 249–254. [CrossRef] [PubMed]
130. Nyberg, L.; Pudas, S. Vellykket minnealdring. Annu. Rev. Psychol. 2019, 70, 219–243. [CrossRef]
131. Blagosklonny, MV Aldring: ROS eller TOR. Cellesyklus 2008, 7, 3344–3354. [CrossRef]
132. Harman, D. Aldring: En teori basert på frie radikaler og strålingskjemi. J. Gerontol. 1956, 11, 298–300. [CrossRef]
133. Chance, B.; Sies, H.; Boveris, A. Hydroperoksidmetabolisme i pattedyrsorganer. Physiol. Rev. 1979, 59, 527–605. [CrossRef]
134. Chang, TS; Cho, CS; Park, S.; Yu, S.; Kang, SW; Rhee, SG Peroxiredoxin III, en mitokondriespesifikk peroksidase, regulerer apoptotisk signalering av mitokondrier. J. Biol. Chem. 2004, 279, 41975–41984. [CrossRef] [PubMed]
135. Dodig, S.; Cepelak, I.; Pavic, I. Kjennetegn på senescens og aldring. Biochem. Med. 2019, 29, 030501. [CrossRef]
136. Herranz, N.; Gil, J. Mekanismer og funksjoner av cellulær senescens. J. Clin. Investere. 2018, 128, 1238–1246. [CrossRef]
137. Vicencio, JM; Galluzzi, L.; Tajeddine, N.; Ortiz, C.; Criollo, A.; Tasdemir, E.; Morselli, E.; Ben Younes, A.; Maiuri, MC; Lavandero, S.; et al. Alderdom, apoptose eller autofagi? Når en skadet celle må bestemme sin vei—En mini-gjennomgang. Gerontology 2008, 54, 92–99. [CrossRef] [PubMed]
138. Yanagi, S.; Tsubouchi, H.; Miura, A.; Matsuo, A.; Matsumoto, N.; Nakazato, M. Virkningene av cellulær senescens i eldre lungebetennelse og aldersrelaterte lungesykdommer som øker risikoen for luftveisinfeksjoner. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 503. [CrossRef]
139. Lawless, C.; Wang, C.; Jurk, D.; Merz, A.; Zglinicki, T.; Passos, JF Kvantitativ vurdering av markører for cellealder. Exp. Gerontol. 2010, 45, 772–778. [CrossRef] [PubMed]
140. Sone, H.; Kagawa, Y. Pancreatic beta-celle-aldring bidrar til patogenesen av type 2-diabetes i høyfett diett-induserte diabetiske mus. Diabetologia 2005, 48, 58–67. [CrossRef]
141. Fyhrquist, F.; Saijonmaa, O.; Strandberg, T. Rollene til senescens og telomerforkorting ved hjerte- og karsykdommer. Nat. Rev. Cardiol. 2013, 10, 274–283. [CrossRef]
142. Minamino, T.; Orimo, M.; Shimizu, I.; Kunieda, T.; Yokoyama, M.; Ito, T.; Nojima, A.; Nabetani, A.; Oike, Y.; Matsubara, H.; et al. En avgjørende rolle for fettvev p53 i reguleringen av insulinresistens. Nat. Med. 2009, 15, 1082–1087. [CrossRef] [PubMed]
143. Unterluggauer, H.; Hampel, B.; Zwerschke, W.; Jansen-Durr, P. Senescensassosiert celledød av menneskelige endotelceller: Rollen til oksidativt stress. Exp. Gerontol. 2003, 38, 1149–1160. [CrossRef] [PubMed]
144. Joseph, JA; Cutler, RC Rollen til oksidativt stress i signaltransduksjonsendringer og celletap i senescens. Ann. New York Acad. Sci. 1994, 738, 37–43. [CrossRef]
145. Hickson, LJ; Langhi Prata, LGP; Bobart, SA; Evans, TK; Giorgadze, N.; Hashmi, SK; Herrmann, SM; Jensen, MD; Jia, Q.; Jordan, KL; et al. Senolytika reduserer senescentceller hos mennesker: Foreløpig rapport fra en klinisk studie av Dasatinib pluss Quercetin hos personer med diabetisk nyresykdom. EBioMedicine 2019, 47, 446–456. [CrossRef]
146. Rettferdighet, JN; Nambiar, AM; Tchkonia, T.; LeBrasseur, NK; Pascual, R.; Hashmi, SK; Prata, L.; Masternak, MM; Kritchevsky, SB; Musi, N.; et al. Senolytika ved idiopatisk lungefibrose: Resultater fra en første-i-menneske, åpen pilotstudie. EBioMedicine 2019, 40, 554–563. [CrossRef] [PubMed]
147. Menicacci, B.; Cipriani, C.; Margheri, F.; Mocali, A.; Giovannelli, L. Modulering av den senescens-assosierte inflammatoriske fenotypen i humane fibroblaster av olivenfenoler. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 2275. [CrossRef] [PubMed]
148. Katsiki, M.; Chondrogianni, N.; Chinou, I.; Rivett, AJ; Gonos, ES Olivenbestanddelen oleuropein viser proteasomstimulerende egenskaper in vitro og gir levetidsforlengelse av humane embryonale fibroblaster. Rejuvenation Res. 2007, 10, 157–172. [CrossRef]
149. Rahimifard, M.; Baeeri, M.; Bahadar, H.; Moini-Nodeh, S.; Khalid, M.; Haghi-Aminjan, H.; Mohammadian, H.; Abdollahi, M. Terapeutiske effekter av gallisk syre i regulering av alderdom og diabetes; en in vitro-studie. Molecules 2020, 25, 5875. [CrossRef]
150. Jung, HJ; Suh, Y. Sirkulerende miRNA i aldring og aldringsrelaterte sykdommer. J. Genet. Genomics 2014, 41, 465–472. [CrossRef]
151. Smith-Vikos, T.; Slack, FJ MicroRNAs og deres roller i aldring. J. Cell Sci. 2012, 125, 7–17. [CrossRef] [PubMed]
152. Verma, P.; Augustine, GJ; Ammar, MR; Tashiro, A.; Cohen, SM En nevrobeskyttende rolle for mikroRNA miR-1000 mediert ved å begrense glutamateksitotoksisitet. Nat. Neurosci. 2015, 18, 379–385. [CrossRef]
153. Jung, HJ; Lee, KP; Milholland, B.; Shin, YJ; Kang, JS; Kwon, KS; Suh, Y. Omfattende miRNA-profilering av skjelettmuskler og serum i indusert og normal musemuskelatrofi under aldring. J. Gerontol. En Biol. Sci. Med. Sci. 2017, 72, 1483–1491. [CrossRef] [PubMed]
154. Feng, Q.; Zheng, S.; Zheng, J. Den nye rollen til mikroRNA i beinremodellering og dens terapeutiske implikasjoner for osteoporose. BioSci. Rep. 2018, 38. [CrossRef]
155. Shao, H.; Yang, L.; Wang, L.; Tang, B.; Wang, J.; Li, Q. MicroRNA-34a beskytter myokardceller mot iskemi-reperfusjonsskade ved å hemme autofagi via regulering av TNF-alfa-ekspresjon. Biochem. Cell Biol. 2018, 96, 349–354. [CrossRef]
156. Kinser, HE; Pincus, Z. MicroRNAs som modulatorer av lang levetid og aldringsprosessen. Nynne. Genet. 2020, 139, 291–308. [CrossRef] [PubMed]
157. Gu, H.; Wu, W.; Yuan, B.; Tang, Q.; Guo, D.; Chen, Y.; Xia, Y.; Hu, L.; Chen, D.; Sha, J.; et al. Genistein oppregulerer miR-20a for å forstyrre spermatogenesen via målretting mot Limk1. Oncotarget 2017, 8, 58728–58737. [CrossRef] [PubMed]
158. Milenkovic, D.; Berghe, WV; Morand, C.; Claude, S.; van de Sandt, A.; Gorressen, S.; Monfoulet, LE; Chirumamilla, CS; Declerck, K.; Szic, KSV; et al. En systembiologisk nettverksanalyse av nutri(epi)genomiske endringer i endotelceller utsatt for epicatechin-metabolitter. Sci. Rep. 2018, 8, 15487. [CrossRef]
159. Tome-Carneiro, J.; Larrosa, M.; Yanez-Gascon, MJ; Davalos, A.; Gil-Zamorano, J.; Gonzalvez, M.; Garcia-Almagro, FJ; Ruiz Ros, JA; Tomas-Barberan, FA; Espin, JC; et al. Ett års tilskudd med et drueekstrakt som inneholder resveratrol modulerer inflammatorisk-relatert mikroRNA og cytokinekspresjon i perifere blodmononukleære celler av type 2 diabetes og hypertensive pasienter med koronararteriesykdom. Pharmacol. Res. 2013, 72, 69–82. [CrossRef]
160. Feletou, M. Endothelium-Dependent Hyperpolarization, and Endothelial Dysfunction. J. Cardiovasc. Pharmacol. 2016, 67, 373–387. [CrossRef]
161. Soloviev, AI; Kizub, IV Mekanismer for vaskulær dysfunksjon fremkalt av ioniserende stråling og mulige mål for dens farmakologiske korreksjon. Biochem. Pharmacol. 2019, 159, 121–139. [CrossRef]
162. Puca, AA; Carrizzo, A.; Ferrario, A.; Villa, F.; Vecchione, C. Endothelial nitrogenoksidsyntase, vaskulær integritet og menneskelig eksepsjonell lang levetid. Free Radic. Res. 2012, 9, 26. [CrossRef]
163. Schulz, E.; Jansen, T.; Wenzel, P.; Daiber, A.; Munzel, T. Nitrogenoksid, tetrahydrobiopterin, oksidativt stress og endoteldysfunksjon ved hypertensjon. Antioksid. Redokssignal. 2008, 10, 1115–1126. [CrossRef] [PubMed]
164. Schulz, E.; Gori, T.; Munzel, T. Oksidativt stress og endoteldysfunksjon ved hypertensjon. Hypertens. Res. 2011, 34, 665–673. [CrossRef]
165. Faria, AM; Papadimitriou, A.; Silva, KC; Lopes de Faria, JM; Lopes de Faria, JB Frakobling av endotel nitrogenoksidsyntase forbedres av grønn te ved eksperimentell diabetes ved å reetablere tetrahydrobiopterinnivåer. Diabetes 2012, 61, 1838–1847. [CrossRef]
166. Landmesser, U.; Dikalov, S.; Pris, SR; McCann, L.; Fukai, T.; Holland, SM; Mitch, VI; Harrison, DG Oksidasjon av tetrahydrobiopterin fører til frakobling av endotelcelle nitrogenoksidsyntase ved hypertensjon. J. Clin. Investere. 2003, 111, 1201–1209. [CrossRef]
167. Stoclet, JC; Chataigneau, T.; Ndiaye, M.; eik, MH; El Bedoui, J.; Chataigneau, M.; Schini-Kerth, VB Vaskulær beskyttelse av diettpolyfenoler. Eur. J. Pharmacol. 2004, 500, 299–313. [CrossRef]
168. Grassi, D.; Necozione, S.; Lippi, C.; Croce, G.; Valeri, L.; Pasqualetti, P.; Desideri, G.; Blumberg, JB; Ferri, C. Kakao reduserer blodtrykk og insulinresistens og forbedrer endotelavhengig vasodilatasjon hos hypertensive. Hypertensjon 2005, 46, 398–405. [CrossRef] [PubMed]
169. Lopez-Sepulveda, R.; Jimenez, R.; Romero, M.; Zarzuelo, MJ; Sanchez, M.; Gomez-Guzman, M.; Vargas, F.; O'Valle, F.; Zarzuelo, A.; Perez-Vizcaino, F.; et al. Vinpolyfenoler forbedrer endotelfunksjonen i store kar hos spontant hypertensive hunnrotter. Hypertensjon 2008, 51, 1088–1095. [CrossRef]
170. Xu, JW; Ikeda, K.; Yamori, Y. Oppregulering av endotelial nitrogenoksidsyntase med cyanidin-3-glukosid, et typisk antocyaninpigment. Hypertensjon 2004, 44, 217–222. [CrossRef]
171. Wu, T.-W.; Zeng, L.-H.; Wu, J.; Fung, K.-P. Morin: Et trepigment som beskytter tre typer menneskelige celler i det kardiovaskulære systemet mot oksyradikal skade. Biochem. Pharmacol. 1994, 47, 1099–1103. [CrossRef]
172. Taguchi, K.; Tano, I.; Kaneko, N.; Matsumoto, T.; Kobayashi, T. Plantepolyfenoler Morin og Quercetin redder produksjon av nitrogenoksid i diabetisk musaorta gjennom distinkte veier. Biomed. Pharmacother. 2020, 129. [CrossRef]
173. Taguchi, K.; Hida, M.; Hasegawa, M.; Matsumoto, T.; Kobayashi, T. Dietary polyphenol morin redder endoteldysfunksjon i en diabetisk musemodell ved å aktivere Akt/eNOS-veien. Mol. Nutr. Mat Res. 2016, 60, 580–588. [CrossRef] [PubMed]
174. Baur, JA; Sinclair, DA Terapeutisk potensial for resveratrol: in vivo-beviset. Nat. Rev. Drug Discov. 2006, 5, 493–506. [CrossRef]
175. Bradamante, S.; Barenghi, L.; Villa, A. Kardiovaskulære beskyttende effekter av resveratrol. Cardiovasc. Drug Rev. 2004, 22, 169–188. [CrossRef] [PubMed]
176. Wallerath, T.; Deckert, G.; Ternes, T.; Anderson, H.; Li, H.; Witte, K.; Forstermann, U. Resveratrol, et polyfenolisk fytoaleksin som finnes i rødvin, forbedrer uttrykket og aktiviteten til endotelial nitrogenoksidsyntase. Opplag 2002, 106, 1652–1658. [CrossRef] [PubMed]
177. Song, J.; Hei.; Luo, C.; Feng, B.; Ran, F.; Xu, H.; Ci, Z.; Xu, R.; Han, L.; Zhang, D. Nye fremskritt i farmakologien til protokatechuic syre: En forbindelse inntatt i daglig mat og urter ofte og tungt. Pharmacol. Res. 2020, 161, 105109. [CrossRef]
178. Masodsai, K.; Lin, YY; Chaunchaiyakul, R.; Su, CT; Lee, SD; Yang, AL Tolvukers administrasjon av protokatechuic syre forbedrer insulinindusert og insulinlignende vekstfaktor-1-indusert vasorelaksasjon og antioksidantaktiviteter i aldrende spontant hypertensive rotter. Næringsstoffer 2019, 11, 699. [CrossRef] [PubMed]
179. Castañeda-Ovando, A.; Pacheco-Hernández, MdL; Páez-Hernández, ME; Rodríguez, JA; Galán-Vidal, CA Kjemiske studier av antocyaniner: En gjennomgang. Food Chem. 2009, 113, 859–871. [CrossRef]
180. Rocha, BS; Gago, B.; Barbosa, RM; Laranjinha, J. Dietary polyfenoler genererer nitrogenoksid fra nitritt i magen og induserer glatt muskelavslapning. Toxicology 2009, 265, 41–48. [CrossRef]
181. Santos-Parker, JR; Strahler, TR; Bassett, CJ; Bispham, NZ; Chonchol, MB; Seler, DR Curcumin-tilskudd forbedrer vaskulær endotelfunksjon hos friske middelaldrende og eldre voksne ved å øke biotilgjengeligheten av nitrogenoksid og redusere oksidativt stress. Aldring 2017, 9, 187–208. [CrossRef]
182. Iside, C.; Scafuro, M.; Nebbioso, A.; Altucci, L. SIRT1 Aktivering av naturlige fytokjemikalier: en oversikt. Front. Pharmacol. 2020, 11, 1225. [CrossRef]
183. Li, D.; Cui, Y.; Wang, X.; Liu, F.; Li, X. Eplepolyfenolekstrakt lindrer lipidakkumulering i fri-fettsyre-eksponerte HepG2-celler via aktiverende autofagi mediert av SIRT1/AMPK-signalering. Phytother. Res. 2020. [CrossRef] [PubMed]
184. Csiszar, A.; Labinskyy, N.; Pinto, JT; Ballabh, P.; Zhang, H.; Losonczy, G.; Pearson, K.; Cabo, Rd; Pacher, P.; Zhang, C.; et al. Resveratrol induserer mitokondriell biogenese i endotelceller. Er. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2009, 297, H13–H20. [CrossRef] [PubMed]
185. Mann, AWC; Li, H.; Xia, N. Rollen til Sirtuin1 i regulering av endotelfunksjon, arteriell ombygging og vaskulær aldring. Front. Physiol. 2019, 10. [CrossRef] [PubMed]
186. Lagouge, M.; Argmann, C.; Gerhart-Hines, Z.; Meziane, H.; Lerin, C.; Daussin, F.; Messadeq, N.; Milne, J.; Lambert, P.; Elliott, P.; et al. Resveratrol forbedrer mitokondriell funksjon og beskytter mot metabolsk sykdom ved å aktivere SIRT1 og PGC-1alfa. Cell 2006, 127, 1109–1122. [CrossRef] [PubMed]
187. Zang, M.; Xu, S.; Maitland-Toolan, KA; Zuccollo, A.; Hou, X.; Jiang, B.; Wierzbicki, M.; Verbeuren, TJ; Cohen, RA polyfenoler stimulerer AMP-aktivert proteinkinase, lavere lipider og hemmer akselerert aterosklerose hos diabetisk LDL-reseptor-mangelfulle mus. Diabetes 2006, 55, 2180–2191. [CrossRef] [PubMed]
188. Sugiyama, M.; Kawahara-Miki, R.; Kawana, H.; Shirasuna, K.; Kuwayama, T.; Iwata, H. Resveratrol-indusert mitokondriell syntese og autofagi i oocytter avledet fra tidlige antralfollikler fra gamle kyr. J. Reprod. Dev. 2015, 61, 251–259. [CrossRef]
189. Visioli, F.; Rodríguez-Pérez, M.; Gómez-Torres, Ó.; Pintado-Losa, C.; Burgos-Ramos, E. Hydroxytyrosol forbedrer mitokondriell energi i en cellulær modell av Alzheimers sykdom. Nutr. Neurosci. 2020, 1–11. [CrossRef] [PubMed]
190. Wu, S.; Tian, L. Diverse fytokjemikalier og bioaktiviteter i den eldgamle frukt og moderne funksjonell mat granateple (Punica granatum). Molecules 2017, 22, 1606. [CrossRef] [PubMed]
191. Tresserra-Rimbau, A.; Medina-Remon, A.; Perez-Jimenez, J.; Martinez-Gonzalez, MA; Covas, MI; Corella, D.; Salas-Salvado, J.; Gomez-Gracia, E.; Lapetra, J.; Aros, F.; et al. Kostinntak og viktige matkilder til polyfenoler i en spansk befolkning med høy kardiovaskulær risiko: PREDIMED-studien. Nutr. Metab. Cardiovasc. Dis. 2013, 23, 953–959. [CrossRef]
192. Schaffer, S.; Asseburg, H.; Kuntz, S.; Muller, WE; Eckert, GP Effekter av polyfenoler på hjernealdring og Alzheimers sykdom: Fokus på mitokondrier. Mol. Neurobiol. 2012, 46, 161–178. [CrossRef] [PubMed]
193. Rein, MJ; Renouf, M.; Cruz-Hernandez, C.; Actis-Goretta, L.; Thakkar, SK; da Silva Pinto, M. Biotilgjengelighet av bioaktive matforbindelser: En utfordrende reise til bioeffektivitet. Br. J. Clin. Pharmacol. 2013, 75, 588–602. [CrossRef] [PubMed]
194. Zhang, L.; Virgous, C.; Si, H. Synergistiske antiinflammatoriske effekter og mekanismer av kombinerte fytokjemikalier. J. Nutr. Biochem. 2019, 69, 19–30. [CrossRef] [PubMed]
【For mer informasjon:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:8613632399501】
