Metabolittprofilering og antialdringsaktivitet av ris Koji fermentert med Aspergillus Oryzae og Aspergillus Cristatus: En sammenlignende studie Ⅱ

3. Diskusjon

Ulike deler av ris, som skall, kli, embryo og endosperm, fra overflaten til innsiden, har ulik kjemisk sammensetning (26). Spesielt inneholder riskli ulikefenolsyrerogflavonoider, som er kjent for å stille utantioksidant aktivitet.I tillegg er riscelleveggen sammensatt av en arabinoxylanstruktur som inkluderer xylose, arabinose, ferulinsyre og ferulsyre (27]. Riscelleveggen er generelt vanskelig å penetrere, og riskoji tilbyr fordelen av enkel penetrering av riscellevegg av forskjellige enzymer som protease og glukosidase fra inokulummikrober (24. Derfor viser ris koiihøyere nivåer av tyrosinaseinhiberende aktivitetogantioksidantaktiviteterenn råvarene fordi den inneholder verdifulle anrikede forbindelser (28.

Klikk her for å få mer informasjon om Cistanche-antioksidantaktivitet

Vi fulgte metabolomikk-tilnærmingen for riskoji fermentert med to forskjellige filamentøse sopp, som belyste signifikante forskjeller i enzymaktivitet, produksjon av metabolitter og bioaktiviteter. Aktivitetene til forskjellige enzymer som a-amylase, &glukosidase og -glukosidase produsert av de inokulerte A. cristatus og A. oryzae økte med fermenteringstiden (figur 3). Fordi disse enzymene bryter ned arabinoxylanstrukturen, ble forskjellige fenolsyrer separert fra riscelleveggen i begge prøvene, som vist i figur 2. Disse fenolsyrene er potensielle antioksidanter som lindrer oksidativt stress 291. Dermed økte antioksidantaktivitetene og TPC-analysen med øker fermenteringstiden ettersom fenolsyreinnholdet ble økt (figur 2 og 4) Spesielt har RAC et høyere innhold av flavonoider enn RAO fordi det har et høyere nivå av -glukosidase, som hydrolyserer -glykosidbindingen fra riscelleveggen under veksten av A. cristatus i ris koji. I tillegg til å løsne fra riscelleveggen, hydrolyserer glukosidase den flavonoide glukosidformen til en aglykonform som har høyere antioksidantaktivitet 30]. Den økte flavonoidglukosidformen og aglykonformen øker antioksidantaktiviteter som ABTS, DPPH FRAP og TFC, som kan påvirke antioksidantaktiviteten til RAC, som vist i korrelasjonsnettverkskartet (Figur 4). Dette fenomenet ble også observert i en tidligere studie som viste biotransformasjon av glukosidisoflavoner til aglykoner og økende mønstre i antioksidantaktivitet i henhold til mentasjonstid i soyabønner fermentert med. krisestatus [311.

RAO har et høyere nivå av a-glukosidaseaktivitet som spalter a-glykosidbindinger og autogenererer høyere innhold av glukose. Foruten det faktum at glukose er den viktigste karbonkilden for sopp, i RAC, sank glukosenivået etter fermentering fordi det ble brukt til syntese av sekundære metabolitter som auroglaucinderivater, som er karakteristiske pigmentforbindelser produsert av A. cristatus, og ikke A. oryzne. Tidligere studier har rapportert at auroglaucinderivater har aktivitet i DPPH og antas å være potensielle antioksidantforbindelser [32]. Videre kunne den kollapsede riscelleveggen tillate enzymer å trenge inn i de innerste delene av risen [24]. Derfor kunne flere og flere metabolitter ekstraheres fritt uten avbrudd fra risens yttervegg.

I korrelasjonsnettverkskartet mellom bioaktiviteter og metabolitter av både RAO og RAC (Figur 4), var de vanlige tendensene at flavonoider, organiske syrer, sukkerderivater og fettsyrer ble foreslått som potensielle bidragsytere til bioaktiviteter. Flavonoider og fenolsyrer er kjente antioksidanter og har mange fordeler med hensyn til ulike funksjoner. På grunn av deres evne til å lindre oksidativt stress, brukes de til å forbedre matkvaliteten og lindre aldring av huden [33]. I tillegg har en tidligere studie rapportert at fettsyrer og antioksidanter kan skape en synergistisk effekt for forebygging og behandling av aldring av huden [34].

På den annen side tjener auroglaucin og lysofosfolipidderivater som ytterligere bidragsytere til metabolitter i RAC [35]. Auroglaucinderivatene har antioksidantaktiviteter, som nevnt ovenfor, og derfor antar vi at de har potensial til å avslutte frie radikaler kjedereaksjoner for å lindre hudpåkjenninger. Yahagi et al. demonstrerte at lysofosfolipider kunne opprettholde hudens fuktighet ved å øke uttrykket av faktorer assosiert med hudbarrieren og hydreringsfunksjonene i huden [36]. Fuktighet er en viktig faktor for sunn hud fordi tørrhet induserer svekkelse av huden som er preget av ruhet, skjellete hud og fine rynker [37,38]. Vi anslår at auroglaucin og lysofosfolipider har bedre hudanti-aldringseffekter ved det siste fermenteringsstadiet i RAC enn i RAO. Zhao et al. demonstrert at Fuzhuan murstein-te, som inneholder den dominerende soppen A. cristatus, kan hemme fotoaldring via quenching av ROS og utløsning av Nrf2-signalkaskader [21]. Derfor antar vi at RAC tilbyr et høyere anti-aldringspotensial enn RAO ved å handle gjennom indirekte ruter som å etablere bedre hudforhold for rikelig med fuktighet oglindrer stress fra frie radikaler.

Totalt sett tror vi at de forbedrede fettsyrene, fenolsyrene, flavonoidene, lysofosfolipider og hydrokinoner kan øke antioksidantaktivitetene og forbedre RNA-ekspresjonen av elastin og kollagen, samt undertrykke RNA-ekspresjonen av MMP-1 på slutten av gjæring. Disse forbindelsene viste forskjellige mønstre av endring i metabolitter i henhold til inokulumsoppen og påvirket forskjellige bioaktiviteter. Denne studien belyste forskjellen i total metabolisme mellom forskjellige arter av samme Aspergillus-slekt ved å bruke en metabolomisk tilnærming. I tillegg påvirket forskjellige enzymaktiviteter produksjonen av forskjellige metabolitter og induserte forskjellige bioaktiviteter i RAO og RAC

4. Materialer og metoder

4.1. Kjemikalier og reagenser

4.2. Prøveforberedelse og ekstraksjon

Koji-formene A. oryzae KCCM 11372 (Korean Culture Center of Microorganism, KCCM; Republic of Korea) og A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF fra Cosmax BTI R&I center; Seongnam, Korea) ble brukt til gjæring av ris og inokulert separat . Hver mikroorganisme ble holdt på maltekstraktagar (maltekstrakt, 20 g; glukose, 20 g; pepton, 1 g; agar, 20 g/l) ved 28 ◦C. Bioprosessen av fermenteringstrinn for koji-produksjon ble tilpasset fra Lee et al. [11]. Rice koji-prøvene fermentert med A. oryzae og A. cristatus ble høstet hver 2. dag (fra dag 0 til dag 8) og lagret ved dypfrysing (-80 ◦C) inntil videre analyser. Alle prøver ble preparert med to biologiske replikater.

Metoden for ekstraksjon av ris koji prøve ble tilpasset fra Lee et al. med små modifikasjoner [11]. Kort fortalt ble de pulveriserte frysetørkede riskoji-prøvene (5 g) ekstrahert ved å tilsette 80 prosent vandig etanol (40 ml) og omrøre på en orbital shaker (200 rpm i 24 timer) ved romtemperatur. Etter sentrifugering av prøvene ved 10,000 rpm i 5 minutter ved 4 ◦C, ble supernatantene filtrert med et 0,22 µm Millex GP-filter (Merck Millipore, Billerica, MA, USA). De filtrerte prøveekstraktene ble tørket ved bruk av en hastighetsvakuumkonsentrator (Hanil, Seoul, Korea) og tørrvekten ble målt for å evaluere ekstraksjonsutbyttet.

4.3. GC–TOF–MS-analyse

Derivatiseringstrinnene til ekstraherte ris koji-prøver var som beskrevet av Lee et al. [11]. GC–TOF–MS-analyse ble utført på et Agilent 7890A GC-system (Santa Clara, CA, USA) med en Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, USA). Bærergassen (helium) ble brukt med en RTx-5MS (30 m lengde × 0,25 mm indre diameter, J&W Scientific, Folsom, CA, USA) ved en konstant strømningshastighet på 1,5 ml/min. Temperaturene til injektoren og ionekilden ble holdt på henholdsvis 250 og 230 ◦C. Ovnstemperaturen ble holdt ved 75 ◦C i 2 minutter og deretter økt til 300 ◦C ved 15 ◦C/min, som ble opprettholdt i 3 minutter. Deretter ble 1 µL av prøven injisert med et masseskanningsområde på m/z 50–800. Alle prøveanalyser ble utført med tre analytiske replikater.

4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS-analyse

De ekstraherte ris-koji-prøvene ble analysert for sekundære metabolitter ved bruk av ultrahøy ytelse væskekromatografi, lineær felle kvadrupol orbitrap tandem massespektrometri (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS) ved å bruke protokollene beskrevet av Kwon et al. [39]. Hver prøve ble separert ved å bruke en Phenomenex KINETEX® C18-kolonne (100 mm 2,1 mm, 1,7 m partikkelstørrelse; Torrance, CA, USA). Massespektrene og fotodiodearrayområdet i både positive og negative ionemoduser ble stilt inn for henholdsvis m/z 100-1000 og 200-600 nm.

4.5. Databehandling og statistisk analyse

De rå GC–TOF–MS- og UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS-dataene ble transformert til netCDF (*.cdf)-format ved bruk av henholdsvis Leco ChromaTOF og Thermo Xcalibur programvare. De respektive nett-CDF (*.cdf)-filene ble utsatt for MetAlign (åpnet 13. juli 2021)) programvaremediert databehandling ved bruk av protokollene beskrevet av Lee et al. [11,24]. De massespektrometriske dataene, som representerer passende toppmasse (m/z), retensjonstid (min) og topparealinformasjon som variabler, ble evaluert ved bruk av SIMCA-P pluss 12.0-programvare (Umetrics, Umea, Sverige) for multivariat statistisk analyse. Før hovedkomponentanalyse (PCA), partiell minste kvadraters diskriminantanalyse (PLS-DA) og ortogonal partiell minste kvadraters diskriminantanalyse (OPLS-DA), ble datasettene log-transformert, og enhetsvariansen ble skalert for å sammenligne riskojien. fermentert med forskjellige sopp. PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, USA) ble brukt til å teste for signifikante forskjeller (p-verdi på < 0.05) ved enveis variansanalyse og for å beregne korrelasjonskoeffisientverdiene for et korrelasjonskart. Korrelasjonsnettverkskartet mellom metabolitter som har en Pearsons korrelasjonskoeffisientverdi høyere enn 0,5 og bioaktiviteter ble konstruert med Cytoscape-programvaren (https://www.cytoscape.org/ (åpnet 13. juli 2021)). Identifiseringen av tentative metabolitter ble utført ved å matche molekylvekter og molekylsammensetning, retensjonstid, massefragment

mønstre og absorbans av ultrafiolette (UV) data fra litteraturen og vårt interne bibliotek

4.6. Bestemmelse av enzymatiske aktiviteter

Enzymatisk aktivitetsanalyser for -amylase, -glukosidase og -glukosidase ble utført i henhold til tidligere studier [25,40,41]. En mengde på 10 g av hver ris koji-prøve ble ekstrahert i 90 ml vann ved å riste på en orbital shaker ved 120 pm og 25 ◦C i 1 time. Etter filtrering av prøvene ble supernatantene brukt til å evaluere enzymaktiviteter.

4.7. Bestemmelse av antioksidantaktiviteter og totalt fenol- og flavonoidinnhold

For å bestemme antioksidantaktiviteten til ris-koji-prøvene, ble ABTS, DPPH, jernreduserende antioksidantkraft (FRAP), totalt fenolinnhold (TPC) og totalt flavonoidinnhold (TFC) analyser utført i tre eksemplarer

ABTS- og FRAP-analysene ble utført ved å bruke metoden beskrevet av Lee et al. [24]. Kort fortalt, ABTS-stamløsningen fortynnet med destillert vann for å oppnå en endelig absorbans på 0.7 ± 0.02 ved 750 nm (180 µL) var tilsatt til hvert prøveekstrakt (20 µL) i en 96-brønnplate. Reaksjonen fikk foregå i 6 minutter i mørket ved romtemperatur. Absorbansen ble målt ved 750 nm ved bruk av et spektrofotometer. For FRAP-analysen, en blanding av 300 mM acetatbuffer (pH 3,6), 20 mM jern(III)klorid og 10 mM 2,4,6-tripyridyl-S-triazin (TPTZ)-løsning i 40 mM HCl (10:1:1, v/v/v) ble fremstilt. Prøven (10 µL) ble blandet med 300 µL FRAP-reagens og inkubert ved romtemperatur i 6 minutter. Absorbansen ble målt ved 570 nm. DPPH-analysen ble utført etter metoden tilpasset fra Won et al. [42], hvor 180 µL av DPPH-stamløsningen (0,2 mM i etanol) ble blandet med 20 µL av riskojien med to forskjellige soppekstrakter i 96-brønnplater og fikk reagere i 20 minutter ved romtemperatur i mørket. Absorbansen for frie radikaler ved DPPH ble målt ved 515 nm. Resultatene av ABTS, FRAP og DPPH er representert som Trolox-ekvivalent antioksidantkapasitet (TEAC) konsentrasjon (mM) per milligram koji. Standard konsentrasjonskurvene varierte fra 0,0078 mM til 1 mM TEAC.

For TFC- og TPC-analysene er en metode brukt av Lee et al. [25] ble fulgt. For TFC-analysen ble 20 µL av hver ris koji-prøve blandet med 20 µL 1 N NaOH og 180 µL 90 prosent dietylenglykol i en 96-brønnplate. Etter inkubering av blandingen i 60 minutter ved romtemperatur ble absorbansen målt ved 405 nm. TFC presenteres som naringin-ekvivalent (NE) konsentrasjon (mM) per milligram koji. Standard konsentrasjonskurven var lineær mellom 0,0027 og 0,3445 mM NE. For analysen av TPC-analysen ble 20 µL av hver prøve inkubert med 100 µL 0,2 N Folin-Ciocalteu-reagens i 96-brønnplater ved romtemperatur i 6 minutter. Deretter ble 80 µL 7,5 prosent natriumkarbonat (Na2CO3)-løsning tilsatt til blandingen og fikk reagere i 60 minutter ved romtemperatur. Til slutt ble absorbansen evaluert ved 750 nm. Resultatene er angitt som gallussyreekvivalenter (GE) konsentrasjoner (mM) per milligram koji i et standard konsentrasjonsområde på 0,0230–2,9391 mM GE.

4.8. Cellekulturer

4.9. Sanntids polymerasekjedereaksjon

For å isolere og kvantifisere det totale RNA fra cellepelletene, ble Trizol-reagens brukt, og analysen ble utført ved bruk av et spektrofotometer. Syntesen av cDNA ble utført i et totalt reaksjonsvolum på 20 ul; reaksjonsblandingen besto av 2 µg totalt RNA, oligo (dT) og revers transkripsjonsforblanding under følgende reaksjonsbetingelser: 45 ◦C i 45 min, etterfulgt av 95 ◦C i 5 min. RT-PCR ble brukt for kvantifisering av genuttrykk, og resultatene ble deretter analysert ved hjelp av StepOne PlusTM systemprogramvaren (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA). RT-PCR-amplifikasjoner ble utført ved bruk av SYBR Green PCR Master Mix med forhåndsblandet ROX (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) og primere (Bioneer, Daejeon, Korea) i et ABI 7300-instrument etter produsentens protokoll. Reaksjonsbetingelsene var som følger: initiering ved 95 ◦C i 10 minutter, etterfulgt av syklusbetingelser på 95 ◦C i 15 s, 60 ◦C i 30 s og 72 ◦C i 30 s i 40 sykluser. -aktin ble brukt som internkontroll.

Avslutningsvis viste ris koji produksjonen av forskjellige metabolitter og bioaktiviteter i henhold til forskjellige Aspergillus-arter som ble brukt. De høyere nivåene avflavonoiderog auroglaucinderivater i RAC resulterte i høyereantioksidant aktivitetenn i RAO. I tillegg kommer de synergistiske effektene av fettsyre ogantioksidantforbindelserfunnet i begge koji var assosiert med RNA-uttrykk avhud anti-aldringsfaktor. Auroglaucinderivater og lysofosfolipider funnet i RAC var også kandidater som kunne assosieres medRNA-uttrykk av hudanti-aldringsfaktorer. Derfor, selv om riskoji er fermentert med medlemmer av samme slekt (Aspergillus), er det betydelige forskjeller i enzymaktiviteter og metabolitter for de forskjellige artene, og de påvirkerbioaktivitetersom for eksempelantioksidantoganti-aldringsaktiviteter. Derfor gir denne studien omfattende innsikt, samt logikk for et rasjonelt valg av inokulasjonsmikrober, mht.

metabolomics, for å forbedre kvaliteten på kommersiell produksjon av koji.

Tilleggsmaterialer:Følgende er tilgjengelig online på, figur S1: PLS-DA poengsummen (A,B) og OPLS-DA poengsummen (C) for riskojifermentert medAspergillus cristatusellerA. oryzaeble hentet fra UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A,C) og GC–TOF–MS (B)., Tabell S1: Liste over signifikant forskjellige metabolitter fra riskojimed forskjelligeAspergillus spp. under fermentering identifisert av UHPLC–LTQ–Orbitrap-MS/MS, Tabell S2: Liste over signifikant forskjellige metabolitter fra riskojimed forskjelligeAspergillus spp. under fermentering identifisert av GC-TOF-MS, Figur S2: Korrelasjonskart over bioaktiviteter (hudcelleeffekt og antioksidantaktivitet) og riskojifermentert medAspergillus cristatusellerA. oryzaemetabolitter i henhold til Pearsons korrelasjonskoeffisient. Hver rute indikerer Pearsons korrelasjonskoeffisientverdier (r).

Forfatterbidrag:Konseptualisering, CL og SL; metodikk, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) og JR; validering, HL, SL og SK (Seoyeon Kyung); formell analyse, HL og SK (Seoyeon Kyung); etterforskning, HL og SL; ressurser, JR, SK (Seunghyun Kang) og MP; skriving—originalt utkast til utarbeidelse, HL; skriving – gjennomgang og redigering, HL og SL; visualisering, HL; tilsyn, SL og CL; prosjektadministrasjon, SK (Seunghyun Kang), MP og CL; finansiering anskaffelse, CL Alle forfattere har lest og samtykket til den publiserteversjon av manuskriptet.

Finansiering:Dette arbeidet ble støttet av Korea Institute of Planning and Evaluation for Technology in Food, Agriculture and Forestry (IPET) gjennom Agricultural Microbiome R&D Program (The Strategic Initiative for Microbiomes in Agriculture and Food), finansiert av departementet for landbruk, mat og distrikter. Affairs(MAFRA) (tilskuddsnummer 918011-04-3-HD020). I tillegg ble dette arbeidet støttet av Korea Institute of Planning and Evaluation for Technology in Food, Agriculture, Forestry (IPET) gjennom High Value-Added Food Technology Development Program, finansiert av departementet for landbruk, mat og bygdesaker (MAFRA) (tilskuddsnummer 318027-04-3-HD030)

Datatilgjengelighetserklæring:Dataene presentert i denne studien er tilgjengelig på forespørsel fratilsvarende forfatter

Anerkjennelser:Denne forskningen ble støttet av Konkuk University Researcher Fund i2020.

Referanser

1. Sanlier, N.; Gokcen, BB; Sezgin, AC Helsefordeler med fermentert mat. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2019, 59, 506–527. [CrossRef]

2. Yu, K.-W.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Hehe, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hwang, J.-H. Optimalisering for tilberedning av riskoji ved bruk av Aspergillus oryzae CJCM-4 isolert fra en koreansk tradisjonell meju. Food Sci. Bioteknologi. 2012, 21, 129–135. [CrossRef]

3. Yang, Y.; Xia, Y.; Lin, X.; Wang, G.; Zhang, H.; Xiong, Z.; Yu, H.; Yu, J.; Ai, L. Forbedring av smaksprofiler i kinesisk risvin ved å lage gjærende gjær med overlegen etanoltoleranse og gjæringsaktivitet. Mat Res. Int. 2018, 108, 83–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ichikawa, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Yazawa, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Iwashita, K.; Hirata, D. Effekt av koji-starter på metabolitter i japansk alkoholholdig drikke sake laget av sake-risen Koshitanrei. Biosci. Bioteknologi. Biochem. 2020, 84, 1714–1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Jay, M.; Sutthanut, K. En lokal thailandsk kultivar klebrig svart riskli: En kilde til funksjonelle forbindelser i immunmodulering, cellelevedyktighet og kollagensyntese, og matrix metalloproteinase-2 og -9 hemming. J. Funksjon. Foods 2014, 7, 650–661. [CrossRef]

6. Kim, AJ; Choi, JN; Kim, J.; Kim, HY; Park, SB; Yeo, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Metabolittprofilering og bioaktivitet av riskoji fermentert av Aspergillus-stammer. J. Microbiol. Bioteknologi. 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Ames, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Oksidanter, antioksidanter og degenerative sykdommer ved aldring. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

8. Valko, M.; Leibfritz, D.; Moncol, J.; Cronin, MT; Mazur, M.; Telser, J. Frie radikaler og antioksidanter i normale fysiologiske funksjoner og menneskelig sykdom. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007, 39, 44–84. [CrossRef]

9. Uttara, B.; Singh, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Oksidativt stress og nevrodegenerative sykdommer: En gjennomgang av oppstrøms og nedstrøms antioksidantterapeutiske alternativer. Curr. Neuropharmacol. 2009, 7, 65–74. [CrossRef]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-W. Antioksidantaktivitet og aktive forbindelser av riskoji fermentert med Aspergillus candidus. Food Chem. 2003, 83, 49–54. [CrossRef]

11. Lee, DE; Lee, S.; Singh, D.; Jang, ES; Shin, HW; Moon, BS; Lee, CH Tidsløste sammenlignende metabolomer for Koji-gjæring med brun-, hvit- og gigantisk embryo-ris. Food Chem. 2017, 231, 258–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Jarrar, M.; Behl, S.; Shaheen, N.; Fatima, A.; Nasab, R. Antialdringseffekter av retinol og alfahydroksysyre på elastinfibre i kunstig fotoaldrede humane hudfibroblastcellelinjer. Int. J. Med Health Biomed. Pharm. Eng. 2015, 7, 328.

13. Bolla, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, VP; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; Joseph, JP; Surapaneni, KM In vitro sårhelingsstyrke av metanolisk bladekstrakt av Aristolochia saccata er muligens mediert av dets stimulerende effekt på kollagen-1 uttrykk. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Schanzer, S.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Påvirkninger av oralt tatt karotenoidrik krøllete grønnkålekstrakt på kollagen I/elastinindeksen i huden. Næringsstoffer 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Majeed, M.; Bhat, B.; Anand, S.; Sivakumar, A.; Paliwal, P.; Geetha, KG Hemming av UV-indusert ROS og kollagenskade av Phyllanthus emblica-ekstrakt i normale humane dermale fibroblaster. J. Cosmet. Sci. 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Masuda, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uwaya, A.; Isami, F.; Matsuda, H. Matrix metalloproteinase-1-hemmende aktiviteter av Morinda citrifolia frøekstrakt og dets bestanddeler i UVA-bestrålte humane dermale fibroblaster. Biol. Pharm. Okse. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jung, S.-H.; Song, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, C.-S. Anti-fotoaldringseffekt av fermentert riskliekstrakt på UV-induserte normale hudfibroblaster. Eur. Mat Res. Teknol. 2010, 231, 163–169. [CrossRef]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Ris-antioksidanter: Fenolsyrer, flavonoider, antocyaniner, proantocyanidiner, tokoferoler, tokotrienoler, -oryzanol og fytinsyre. Food Sci. Nutr. 2014, 2, 75–104. [CrossRef]

19. Bechman, A.; Phillips, RD; Chen, J. Endringer i utvalgte fysiske egenskaper og enzymaktivitet til ris og byggkoji under gjæring og lagring. J. Mat. Sci. 2012, 77, M318–M322. [CrossRef]

20. Kang, D.; Su, M.; Duan, Y.; Huang, Y. Eurotium cristatum, en potensiell probiotisk sopp fra Fuzhuan murstein te, lindret fedme hos mus ved å modulere tarmmikrobiota. Matfunksjon. 2019, 10, 5032–5045. [CrossRef]

21. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, SH Beskyttelse av UVB-indusert fotoaldring av Fuzhuan-Brick Tea Aqueous Extract via MAPKs/Nrf2--mediert nedregulering av MMP-1. Næringsstoffer 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Hur, SJ; Lee, SY; Kim, YC; Choi, I.; Kim, GB Effekt av gjæring på antioksidantaktiviteten i plantebasert mat. Food Chem. 2014, 160, 346–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huang, L.; Dong, M.-S. Online screening og identifisering av frie radikaler som fjerner forbindelser i Angelica dahurica fermentert med Eurotium cristatum ved bruk av et HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS-system. Food Chem. 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Lee, S.; Lee, DE; Singh, D.; Lee, CH Metabolomics viser optimal kornforbehandling (fresing) mot Rice Koji Fermentation. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 2694–2703. [CrossRef]

Spør om mer:

E-post:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: pluss 86 15292862950