8. Konklusjoner

Naturlig avledede molekyler brukes tradisjonelt i hudbeskyttelsesprodukter (tabell 1, CosIng-inventar). Følgelig er naturlige forbindelser isolert og/eller produsert ved bruk av bioteknologiske verktøy fra mikroorganismer allerede brukt til dermatologiske formål i aktuelle kosmetiske formuleringer. Disse produktene kan forbedre hudens utseende estetisk, men kan også forebygge og/eller behandle aldersrelaterte hudlidelser. Utover de "etablerte" molekylene er det flere små molekyler og/eller enzymer avledet fra mikroorganismer som har stort potensiale for å bli brukt i kosmetikk eller kosmetikkformuleringer (tabell 1).

I følge relevante studier er cistanche en vanlig urt som er kjent som "mirakelurten som forlenger livet". Hovedkomponenten ercistanoside, som har ulike effekter som f.eksantioksidant, anti-inflammatorisk, ogfremme av immunfunksjonen. Mekanismen mellom cistanche oghudblekingligger i antioksidanteffekten til cistancheglykosider. Melanin i menneskelig hud produseres ved oksidasjon av tyrosin katalysert avtyrosinase, og oksidasjonsreaksjonen krever deltakelse av oksygen, så de oksygenfrie radikalene i kroppen blir en viktig faktor som påvirker melaninproduksjonen. Cistanche inneholder cistanosid, som er en antioksidant og kan redusere dannelsen av frie radikaler i kroppen, dermedhemmendemelaninproduksjon.

Klikk på Cistanche Powder Bulk

For mer info:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Interessant nok er flere biomolekyler som allerede er inkludert i den europeiske oversikten over aksepterte kosmetiske ingredienser (CosIng-inventar) [14] registrert for en av deres biologiske aktiviteter, men brukes annerledes i kosmetiske applikasjoner. Et karakteristisk eksempel er kojinsyre, som er registrert som en "antioksidant", mens hovedanvendelsen i kosmetikk er dens sterke antityrosinaseaktivitet, og dermed dens anvendelse som hudblekemiddel (tabell 1).

Tatt i betraktning det enorme mikrobielle biologiske mangfoldet og mikrobiell tilpasning til praktisk talt ethvert miljø på jorden, er det å forvente at mikrober representerer et ekstraordinært utvalg av svært forskjellige strukturelle stillaser av biomolekyler med potensielle hudbeskyttende aktiviteter. Selv om forskning på det marine miljøet har begynt å matche senere enn det terrestriske miljøet, har vi flere tilfeller der kosmetiske søknader og patenter går inn for marine-avledede mikroorganismer. Som nevnt i tilfellet med MAA kjent for sin fotobeskyttende aktivitet, er de inkludert i flere patenter for naturlige UV-filtre. De fleste av dem ble imidlertid utviklet med mikroorganismer fra marine miljøer (72,2 prosent), mens patenter utviklet på terrestriske og ferskvannsmikroorganismer ikke har oversteget henholdsvis 21,4 prosent og 2,4 prosent [135]. Denne studien reflekterer at til dags dato har det terrestriske miljøet i noen tilfeller blitt neglisjert.

Interessekonflikter:Forfatterne erklærer ingen interessekonflikt.

Forkortelser

UVB ultrafiolett B

Referanser

1. Ma, T.; Deng, Z.; Liu, T. Mikrobielle produksjonsstrategier og anvendelser av lykopen og andre terpenoider. World J. Microbiol. Bioteknologi. 2016. [CrossRef] [PubMed]

2. Corinaldesi, C.; Barone, G.; Marcellini, F.; Dell'Anno, A.; Danovaro, R. Marine mikrobielle avledede molekyler og deres potensielle bruk i kosmetiske og kosmetiske produkter. Mar. Drugs 2017, 15., 118. [CrossRef]

3. Lobanovska, M.; Pilla, G. Penicillins oppdagelse og antibiotikaresistens: lærdom for fremtiden? J. Biol. Med. 2017, 90, 135–145.

4. Raja, A.; Prabakarana, P. Actinomycetes, og Drug-An Overview. Er. J. Drug Discov. Dev. 2011, 1, 75–84. [CrossRef]

5. Berdy, J. Bioaktive mikrobielle metabolitter. J. Antibiot. 2005, 58, 1–26. [PubMed]

6. Ferreira, A.; Vecino, X.; Ferreira, D.; Cruz, JM; Moldes, AB; Rodrigues, LR Nye kosmetiske formuleringer som inneholder et biooverflateaktivt middel fra Lactobacillus paracasei. Kolloider Surf. B Biointerfaces 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]

7. Argyropoulou, A.; Aligiannis, N.; Trougakos, IP; Skaltsounis, AL Naturlige forbindelser med antialdringsaktivitet. Nat. Prod. Rep. 2013, 30, 1412–1437. [CrossRef]

8. Cavinato, M.; Jansen-Durr, P. Molekulære mekanismer for UVB-indusert senescens av dermale fibroblaster og dens relevans for fotoaldring av menneskelig hud. Exp. Gerontol. 2017, 94, 78–82.

9. Velarde, MC; Demaria, M. Målretting mot aldrende celler: Mulige implikasjoner for å forsinke aldring av huden: En minigjennomgang. Gerontologi 2016, 62, 513–518.

10. Trougakos, IP; Sesti, F.; Tsakiri, E.; Gorgoulis, VG Ikke-enzymatiske post-translasjonelle proteinmodifikasjoner og deregulering av proteostasenettverk i karsinogenese. J. Proteomics 2013, 92, 274–298.

11. Sklirou, A.; Papanagnou, ED; Fokialakis, N.; Trougakos, IP Kreftkjemoforebygging via aktivering av proteostatiske moduler. Kreft Lett. 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]

12. Markedsundersøkelsesrapporter. (åpnet 22. august 2017).

13. Hyde, KD; Bahkali, AH; Moslem, MA Fungi—En uvanlig kilde for kosmetikk. Soppdykkere. 2010, 43, 1–9. [CrossRef]

14. Beregningsbeholdning. Tilgjengelig på nettet: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_no (åpnet 22. mars 2018).

15. Chai, TT; Law, YC; Wong, FC; Kim, SK Enzymassistert oppdagelse av antioksidantpeptider fra spiselige marine virvelløse dyr: En gjennomgang. Mar. Drugs 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; Larsson, NG Pattedyrmitokondrier og aldring: en oppdatering. Celle. Metab. 2017, 25, 57–71. [CrossRef]

17. Kusumawati, I.; Indrayanto, G. Naturlige antioksidanter i kosmetikk. Stud. Nat. Prod. Chem. 2013, 40, 485–505.

18. Abramoviˇc, H.; Grobin, B.; Ulrich, NP; Cigi´c, B. Relevans og standardisering av in vitro antioksidantanalyser: ABTS, DPPH og Folin-Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1–9. [CrossRef]

19. Huang, WY; Cai, YZ; Xing, J. En potensiell antioksidantressurs: endofytiske sopp fra medisinplanter. Econ. Bot. 2007, 61, 14–30. [CrossRef]

20. Danagoudar, A.; Joshi, CG; Kumar, RS; Poyya, J.; Nivya, T.; Hulikere, MM; Appaiah, KAA Molekylær profilering og antioksidant samt det antibakterielle potensialet til polyfenolproduserende endofytisk sopp-Aspergillus austroafricanus CGJ-B3. Mykologi 2017, 8, 28–38. [CrossRef]

21. Colla, LM; Furlong, EB; Costa, JAV Antioksidantegenskaper til Spirulina (Arthospira) platensis dyrket under forskjellige temperaturer og nitrogenregimer. Braz. Arch. Biol. Teknol. 2007, 50, 161–167. [CrossRef]

22. Miranda, MS; Sato, S.; Mancini-Filho, J. Antioksidantaktivitet av mikroalgen Chlorella vulgaris dyrket under spesielle forhold. Boll. Chim. Gård. 2001, 140, 165–168.

23. Shalaby, ES; Shanab, SMM Antiradikal og antioksidantaktivitet av forskjellige Spirulina platensis-ekstrakter mot DPPH og ABTS radikale analyser. Indian J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [CrossRef]

24. Goiris, K.; Muylaert, K.; Voorspoels, S.; Noten, B.; De Paepe, D.; GJ, B.; De Cooman, L. Deteksjon av flavonoider i mikroalger fra forskjellige evolusjonære linjer. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [CrossRef]

25. Jerez-Martel, I.; García-Poza, S.; Rodríguez-Martel, G.; Rico, M.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL Fenolprofil og antioksidantaktivitet av råekstrakter fra mikroalger og cyanobakteriestammer. J. Food Qual. 2017, 4, 1–8. [CrossRef]

26. Singh, DP; Prabha, R.; Verma, S.; Meena, KK; Yandigeri, M. Antioksidantegenskaper og polyfenolinnhold i terrestriske cyanobakterier. 3 Bioteknologi. 2017. [CrossRef]

27. Liu, Y.; Nan, L.; Liu, J.; Yan, H.; Zhang, D.; Han, X. Isolering og identifikasjon av resveratrol-produserende endofytter fra vindruen Cabernet Sauvignon. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. Shi, J.; Zeng, Q.; Liu, Y.; Pan, Z. Alternaria sp. MG1, en resveratrolproduserende sopp: isolasjon, identifikasjon og optimale dyrkingsforhold for resveratrolproduksjon. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]

29. Baxter, RA Anti-aldringsegenskaper til resveratrol: gjennomgang og rapport om en potent ny antioksidant hudpleieformulering. J. Cosmet. Dermatol. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]

30. Zhang, J.; Shi, J.; Liu, Y. Biokonvertering av resveratrol ved bruk av hvileceller fra ikke-genmodifiserte Alternaria sp. Bioteknologi. Appl. Biochem. 2013, 60, 236–243. [CrossRef]

31. An, SM; Koh, JS; Boo, YC P-kumarsyre hemmer ikke bare menneskelig tyrosinaseaktivitet in vitro, men også melanogenese i celler eksponert for UVB. Phytother. Res. 2010, 24, 1175–1180.

32. Lourith, N.; Kanlayavattanakul, M. Antioksidantaktiviteter og fenoler av Passiflflora edulis frø gjenvunnet fra juiceproduksjonsrester. J. Oleo. Sci. 2013, 62, 235–240. [CrossRef]

33. Lopez-Burillo, S.; Tan, DX; Mayo, JC; Sainz, RM; Manchester, LC; Reiter, RJ Melatonin, xanthurensyre, resveratrol, EGCG, vitamin C og alfa-liponsyre reduserer differensielt oksidativ DNA-skade indusert av Fenton-reagenser: en studie av deres individuelle og synergistiske handlinger. J. Pineal. Res. 2003, 34, 269–277. [CrossRef] [PubMed]

34. Satooka, H.; Kubo, I. Resveratrol som en kcat-type hemmer for tyrosinase: Potensiert melanogenese-hemmer. Bioorg. Med. Chem. 2012, 20, 1090–1099. [CrossRef]

35. Li, M.; Kildegaard, KR; Chen, Y.; Rodriguez, A.; Borodina, I.; Nielsen, J. De novo produksjon av resveratrol fra glukose eller etanol av konstruert Saccharomyces cerevisiae. Metab. Eng. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

36. Lim, CG; Fowler, ZL; Hueller, T.; Schaeffer, S.; Koffffas, MA Høyytelsesresveratrolproduksjon i konstruert Escherichia coli. Appl. Environ. Microbiol. 2011, 77, 3451–3460. [CrossRef]

37. Sydor, T.; Schaeffer, S.; Boles, E. Betydelig økning i resveratrolproduksjon ved rekombinante industrielle gjærstammer ved bruk av det rike mediet. Appl. Environ. Microbiol. 2010, 76, 3361–3363. [CrossRef]

38. Balestrazzi, A.; Bonadei, M.; Calvio, C.; Mattivi, F.; Carbonera, D. Blad-assosierte bakterier fra transgene hvit poppel som produserer resveratrol-lignende forbindelser: isolasjon, molekylær karakterisering og evaluering av oksidativ stresstoleranse. Kan. J. Microbiol. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]

39. Xiao, J.; Zhang, Q.; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; Zhang, A.-L.; Gao, J.-M. Sekundære metabolitter fra den endofytiske Botryosphaeria dothidea av Melia azedarach og deres antifungale, antibakterielle, antioksidant- og cytotoksiske aktiviteter. J. Agric. Food Chem. 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]

40. Mou, Y.; Meng, J.; Fu, X.; Wang, X.; Tian, ​​J.; Wang, M.; Peng, Y.; Zhou, L. Antimikrobielle og antioksidantaktiviteter og effekt av 1-heksadecentilsetning på palmarumycin C2- og C3-utbytte i flytende kultur av endofytisk sopp Berkleasmium sp. Dzf12. Molecules 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]

41. Kerksick, C.; Willoughby, D. Antioksidantrollen til glutation- og N-acetyl-cysteintilskudd og treningsindusert oksidativt stress. J. Int. Soc. Sports Nutr. 2005, 2, 38–44. [CrossRef]

42. Sonthalia, S.; Daulatabad, D.; Sarkar, R. Glutathione som et hudblekingsmiddel: fakta, myter, bevis og kontroverser. Indian J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [CrossRef]

43. Fei, L.; Wang, Y.; Chen, S. Forbedret glutationproduksjon ved genuttrykk i Pichia pastoris. Bioprosess. Biosystem. Eng. 2009, 32, 729–735. [CrossRef] [PubMed]

44. Wang, C.; Zhang, J.; Wu, H.; Li, Z.; Ye, Q. Heterolog gshF-genekspresjon i forskjellige vektorsystemer i Escherichia coli for forbedret glutationproduksjon. J. Biotechnol. 2015, 214, 63–68. [CrossRef]

45. Palozza, P.; Krinsky, NI Astaxanthin og canthaxanthin er potente antioksidanter i en membranmodell. Arch. Biochem. Biofys. 1992, 267, 291–295. [CrossRef] 46. Yamamoto, K.; Hara, KY; Morita, T.; Nishimura, A.; Sasaki, D.; Ishii, J. Forbedring av astaxanthinproduksjon i Xanthophyllomyces dendrorhous ved effektiv metode for fullstendig sletting av gener. Microb. Cell Fakta. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. Tripathi, U.; Sarada, R.; Ravishankar, GA Effekt av kulturforhold på vekst av grønne alger - Haematococcus pluvialis og astaxanthin produksjon. Acta Physiol. Anlegg. 2002, 24, 323–329. [CrossRef]

48. Mueller, L.; Boehm, V. Antioksidantaktivitet av betakarotenforbindelser i forskjellige in vitro-analyser. Molecules 2011, 16, 1055–1069. [CrossRef]

49. Zhu, F.; Lu, L.; Fu, S.; Zhong, X.; Nynne.; Deng, Z. Målrettet utvikling og oppskalering av lykopen overproduksjon i Escherichia coli. Prosess. Biochem. 2015, 50, 341–346. [CrossRef]

50. Nelis, HJ; De Leenheer, A. P, Reinvestigation of Brevibacterium sp. stamme KY-4313 som en kilde til canthaxanthin. Appl. Environ. Microbiol. 1989, 55, 2505–2510.

51. Sindhu, ER; Preethi, KC; Kuttan, R. Antioksidantaktivitet av karotenoidlutein in vitro og in vivo. Indian J. Exp. Biol. 2010, 843–848.

52. Del Campo, JA; Moreno, J.; Rodríguez, H.; Angeles Vargas, M.; Rivas, J.; Guerrero, MG Karotenoidinnhold i klorofytmikroalger: faktorer som bestemmer luteinakkumulering i Muriellopsis sp. (Chlorophyta). J. Biotechnol. 2000, 76, 51–59. [CrossRef]

53. Venugopalan, V.; Tripathi, SK; Nahar, P.; Saradhi, PP; Das, RH; Gautam, HK Karakterisering av canthaxanthin isomerer isolert fra en ny jord Dietzia sp. og deres antioksidantaktiviteter. J. Microbiol. Bioteknologi. 2013, 23, 237–245. [CrossRef]

54. Mahapatra, S.; Banerjee, D. Evaluering av in vitro antioksidantstyrke av eksopolysakkarid fra endofytisk Fusarium solani SD5. Int. J. Biol. Macromol. 2013, 53, 62–66. [CrossRef]

55. Zheng, LP; Zou, T.; Ma, YJ; Wang, JW; Zhang, YQ Antioksidant- og DNA-skadebeskyttende aktivitet til eksopolysakkarider fra den endofytiske bakterien Bacillus cereus SZ1. Molecules 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. Liu, J.; Luo, J.; Ja, H.; Sun, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Produksjon, karakterisering og antioksidantaktiviteter in vitro av eksopolysakkarider fra endofytisk bakterie Paenibacillus polymyxa EJS-3. Karbohydr. Polym. 2009, 78, 275–281. [CrossRef]

57. Liu, J.; Luo, J.; Ja, H.; Sun, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Middels optimalisering og strukturell karakterisering av eksopolysakkarider fra endofytisk bakterie Paenibacillus polymyxa EJS-3. Karbohydr. Polym. 2010, 79, 206–213. [CrossRef]

58. Xiao, R.; Zheng, Y. Oversikt over mikroalger ekstracellulære polymere stoffer (EPS) og deres anvendelser. Bioteknologi. Adv. 2016, 34, 1225–1244. [CrossRef]

59. Chen, Y.; Mao, W.; Tao, H.; Zhu, W.; Qi, X.; Chen, Y. Strukturell karakterisering og antioksidantegenskaper til et eksopolysakkarid produsert av endofytisk mangrovesopp Aspergillus sp. Y16. Bioressur. Teknol. 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]

60. Serrato, RV; Sassaki, GL; Cruz, LM; Pedrosa, FO; Gorin, PA; Iacomini, M. Kulturbetingelser for produksjon av et surt eksopolysakkarid av den nitrogenfikserende bakterien Burkholderia tropica. Kan. J. Microbiol. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]

61. Trabelsi, L.; Chaieb, O.; Mnari, A.; Abid-Essafifi, S.; Aleya, L. Delvis karakterisering og antioksidant- og antiproliferative aktiviteter av de vandige ekstracellulære polysakkaridene fra den termofile mikroalgen Graesiella sp. BMC-komplement. Altern. Med. 2016. [CrossRef]

62. Romay, C.; Gonzalez, R.; Ledon, N.; Ramirez, D.; Rimbau, V. C-phycocyanin: et biliprotein med antioksidant, anti-inflammatorisk og nevrobeskyttende effekter. Curr. Protein Pept. Sci. 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]

63. Tasar, OC; Erdal, S.; Taskin, M. Chitosan-produksjon av psykrotolerant Rhizopus oryzae under ikke-sterile åpne gjæringsforhold. Int. J. Biol. Macromol. 2016, 89, 428–433. [CrossRef]

64. Asachi, R.; Karimi, K. Forbedret etanol- og kitosanproduksjon fra hvetehalm av Mucor indicus med minimalt næringsforbruk. Prosess. Biochem. 2013, 48, 1524–1531. [CrossRef]

65. Logesh, AR; Thillaimaharani, KA; Sharmila, K.; Kalaiselvam, M.; Raffiffiffi, SM Produksjon av kitosan fra endolittiske sopp isolert fra mangrovemiljø og dets antagonistiske aktivitet. Asiatisk Pac. J. Trop. Biomed. 2012, 2, 140–143. [CrossRef]

66. Ordonñez, L.; Garciía, J.; Bolanños, G. Produserer kitin og kitinglukankomplekser fra Aspergillus niger biomasse ved bruk av subkritisk vann. I Proceedings of the Ibero-American Conference on Supercritical Fluids, Cartagena, Colombia, 1.–5. april 2013.

67. Guo, J.; Rao, Z.; Yang, T.; Man, Z.; Xu, M.; Zhang, X. Høynivåproduksjon av melanin av et nytt isolat av Streptomyces kathirae. FEMS Microbiol. Lett. 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]

68. Tarangini, K.; Mishra, S. Produksjon av melanin av jordmikrobielt isolat på fruktavfallsekstrakt: to-trinns optimalisering av nøkkelparametere. Bioteknologi. Rep. 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]

69. Beckstead, AA; Zhang, Y.; Hilmer, JK; Smith, HJ; Bermel, E.; Foreman, CM Ultrarask deaktivering av eksitert tilstand av bakteriepigmentet violacein. J. Phys. Chem. 2017. [CrossRef] [PubMed]

70. Ahmad, WA; Yusof, NZ; Nordin, N.; Zakaria, ZA; Rezali, MF Produksjon og karakterisering av violacein av lokalt isolerte Chromobacterium violaceum dyrket i landbruksavfall. Appl. Biochem. Bioteknologi. 2012, 167, 1220–1234. [CrossRef]

71. Wang, H.; Jiang, P.; Lu, Y.; Ruan, Z.; Jiang, R.; Xing, X.-H. Optimalisering av kulturbetingelser for produksjon av violacein ved en ny stamme av Duganella sp. B2. Biochem. Eng. J. 2009, 44, 119–124. [CrossRef]

72. Pathak, J.; Sonker, AS; Richa, R.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; Singh, V.; Ahmed, H. Screening og delvis rensing av fotobeskyttende pigment scytonemin fra cyanobakterielle skorper som bor på de historiske monumentene i og rundt Varanasi, India. Microbiol. Res. 2017. [CrossRef]

73. Chen, J.; Zhao, L.; Xu, J.; Yang, R.; Han, S.; Yan, X. Bestemmelse av oksidert scytonemin i Nostoc kommune Vauch dyrket under forskjellige forhold ved høyytelses væskekromatografi kombinert med trippel kvadrupol massespektrometri. J. Appl. Phycol. 2013, 25, 1001–1007. [CrossRef]

74. Nakashima, T.; Anzai, K.; Kuwahara, N.; Komaki, H.; Miyadoh, S.; Harayama, S. Fysisk-kjemiske karakterer av en tyrosinaseinhibitor produsert av Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815. Biol. Pharm. Okse. 2009, 32, 832–836. [CrossRef]

75. Kurbanoglu, EB; Ozdal, M.; Ozdal, OG; Algur, OF Forbedret produksjon av prodigiosin av Serratia marcescens MO-1 ved bruk av ramhorn-pepton. Braz. J. Microbiol. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]

76. Boric, M.; Danevcic, T.; Stopar, D. Prodigiosin fra Vibrio sp. DSM 14379; et nytt UV-beskyttende pigment. Microb. Ecol. 2011, 62, 528–536. [CrossRef]

77. Lawrence, KP; Gacesa, R.; Lang, PF; Young, AR Molekylær fotobeskyttelse av humane keratinocytter in vitro av den naturlig forekommende mycosporin-lignende aminosyren polyeten. Br. J. Dermatol. 2017, 178, 1353–1363. [CrossRef]

78. Rastogi, RP; Incharoensakdi, A. Karakterisering av UV-screeningsforbindelser, mycosporinlignende aminosyrer og scytonemin i cyanobakterien Lyngbya sp. CU2555. FEMS Microbiol. Ecol. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]

79. Libkind, D.; Moline, M.; Sommaruga, R.; Sampaio, JP; van Broock, M. Fylogenetisk fordeling av soppcyklosporin i Pucciniomycotina (Basidiomycota). Gjær (Chichester, England) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]

80. Kogej, T.; Gostincar, C.; Volkmann, M.; Gorbushina, AA; Gunde-Cimerman, N.; Kogej, T.; Gorbushina, AA Mykosporiner i ekstremofile sopp - Nye komplementære osmolytter? Environ. Chem. 2006, 3, 105–110. [CrossRef]

81. Wei, S.; Xu, N.; Ji, Z. Identifikasjon av en kojic-syreproduserende Aspergillus afflatus F52. Acta Microbiol. Synd. 2014, 1155–1160.

82. El-Aasar, SA Studier av kulturforhold på kojinsyreproduksjon av Aspergillus parasiticus. Int. J. Agric. Biol. 2006, 8, 468–473.

83. Mohamad, R.; Ariffff, AB Biotransformasjon av ulike karbonkilder til kojinsyre ved cellebundet enzymsystem av A. afflatus Link 44-1. Biochem. Eng. J. 2007, 35, 203–209. [CrossRef]

84. Zhao, L.; Kim, JC; Paik, MJ; Lee, W.; Hur, JS Et multifunksjonelt og mulig UV-beskyttende middel for huden, (3R)-5-hydroksymellein, produsert av en endolitisk sopp isolert fra Parmotrema austrosinense. Molecules 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. Robledo, A.; Aguilera-Carbo, A.; Rodriguez, R.; Martinez, JL; Garza, Y.; Aguilar, CN Ellaginsyreproduksjon av Aspergillus niger i faststoffgjæring av granateplerester. J. Ind. Microbiol. Bioteknologi. 2008, 35, 507–513. [CrossRef]

86. Smith, WP Effektene av aktuell L(pluss) melkesyre og askorbinsyre på hudbleking. Int. J. Cosmet. Sci. 1999, 21, 33–40. [CrossRef] [PubMed]

87. Maas, RH; Springer, J.; Eggink, G.; Weusthuis, RA Xylosemetabolisme i soppen Rhizopus oryzae: effekt av vekst og respirasjon på L pluss-melkesyreproduksjon. J. Ind. Microbiol. Bioteknologi. 2008, 35, 569–578. [CrossRef]

88. Shih, IL; Van, YT Produksjon av poly-(gamma-glutaminsyre) fra mikroorganismer og dens ulike anvendelser. Bioressur. Teknol. 2001, 79, 207–225. [CrossRef]

89. Schallreuter, KU; Wood, JW En mulig virkningsmekanisme for azelainsyre i human epidermis. Arch. Dermatol. Res. 1990, 282, 168–171. [CrossRef]

90. Balina, LM; Graupe, K. Behandlingen av melasma er 20 prosent azelainsyre mot 4 prosent hydrokinonkrem. Int. J. Dermatol. 1991, 30, 893–895. [CrossRef]

91. Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS Identifikasjon av tyrosinasehemmere i kulturer av Pityrosporum og deres melanocytotoksiske effekt. Pigment. Cell 1979, 4, 234–243.

92. Yin, C.; Zhang, C.; Gao, M. Enzymkatalysert syntese av vitamin E-succinat ved bruk av en kjemisk modifisert ingen-435. Hake. J. Chem. Eng. 2011, 19, 135–139. [CrossRef]

93. Wicken, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW Sammenlignende studier på isolering av membran lipoteichoic acid fra Lactobacillus ferment. J. Bacteriol. 1973, 113, 365–372.

94. Tokiwa, Y.; Kitagawa, M.; Raku, T. Enzymatisk syntese av arbutin undecylenic acid ester og dens hemmende effekt på sopptyrosinase. Bioteknologi. Lett. 2007, 29, 481–486. [CrossRef]

95. Mapari, SA; Meyer, AS; Thrane, U.; Frisvad, JC Identifikasjon av potensielt trygge lovende soppcellefabrikker for produksjon av polyketid naturlige matfargestoffer ved bruk av kjemotaxonomisk begrunnelse. Microb. Cell Fakta. 2009. [CrossRef]

96. Dufossé, L. Encyclopedia of Microbiology, 3. utg.; Academic Press: New York, NY, USA, 2009; Mikrobielle pigmenter; s. 457–471.

97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: Et effektivt naturlig stoff for å forhindre UVA-indusert for tidlig fotoaldring. Skin Pharmacol. Physiol. 2004, 17, 232–237. [CrossRef]

98. Becker, J.; Schafer, R.; Kohlstedt, M.; Harder, BJ; Borchert, NS; Stoveken, N. Systems metabolic engineering av Corynebacterium glutamicum for produksjon av den kjemiske chaperone ektoine. Microb. Cell Fakta. 2013. [CrossRef] [PubMed]

99. Botta, C.; Di Giorgio, C.; Sabatier, AS; De Meo, M. Genotoksisitet av synlig lys (400–800 nm) og fotobeskyttelsesvurdering av seksjon, L-ergothionein og mannitol og fire solkremer. J. Photochem. Fotobiol. B. 2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]

100. Pugh, S.; McKenna, R.; Halloum, I.; Nielsen, DR Engineering Escherichia coli for fornybar benzylalkoholproduksjon. Metab. Eng. 2015, 2, 39–45. [CrossRef]

101. Ni, J.; Tao, F.; Du, H.; Xu, P. Etterligner en naturlig vei for de novo biosyntese: naturlig vanillinproduksjon fra tilgjengelige karbonkilder. Sci. Rep. 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. Yamada, M.; Okada, Y.; Yoshida, T.; Nagasawa, T. Vanillinproduksjon ved bruk av Escherichia coli-celler som overuttrykker isoeugenol monooksygenase av Pseudomonas putida. Bioteknologi. Lett. 2008, 30, 665–670. [CrossRef]

103. Zhao, L.-Q.; Sun, Z.-H.; Zheng, P.; Zhu, L.-L. Biotransformasjon av isoeugenol til vanillin av en ny stamme av Bacillus fusiformis. Bioteknologi. Lett. 2005, 27, 1505–1509. [CrossRef]

104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. Stort bidrag fra Ehrlich-veien for produksjon av 2-fenyletanol/rosesmak i Ashbya gossypii. FEMS Gjær Res. 2014, 14, 833–844. [CrossRef]

105. Eichmann, MMW; Schrader, J. En vandig-organisk tofase bioprosess for effektiv produksjon av de naturlige aromakjemikaliene 2-fenyletanol og 2-fenyletylacetat med gjær. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2006, 71, 440–443. [CrossRef]

106. Willrodt, C.; David, C.; Cornelissen, S.; Buhler, B.; Julsing, MK; Schmid, A. Konstruere produktiviteten til rekombinant Escherichia coli for limonendannelse fra glyserol i minimale medier. Bioteknologi. J. 2014, 9, 1000–1012. [CrossRef]

107. Dobler, L.; de Carvalho, BR; Alves, S.; Neves, BC; Freire, G.; Almeida, RV Forbedret rhamnolipidproduksjon ved at Pseudomonas aeruginosa overuttrykker estA i et enkelt medium. PloS ONE 2017, 12, e0183857. [CrossRef]

108. Desai, JD; Banat, IM Mikrobiell produksjon av overflateaktive stoffer og deres kommersielle potensial. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1997, 47–64.

109. Castelblanco-Matiz, LM; Barbachano-Torres, A.; Ponce-Noyola, T.; Ramos-Valdivia, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, CM Karotenoidproduksjon og genuttrykk i en astaxanthin-overproduserende Xanthophyllomyces dendrorhous mutantstamme. Arch. Microbiol. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]

110. Berman, J.; Zorrilla-Lopez, U.; Farre, G.; Zhu, C.; Sandmann, G.; Twyman, RM; Capell, T.; Christou, P. Ernæringsmessig viktige karotenoider som forbrukerprodukter. Phytochem. Rev. 2015, 14, 727–743. [CrossRef]

111. Henriquez, V.; Escobar, C.; Galarza, J.; Gimpel, J. Karotenoider i mikroalger. I Karotenoider i naturen; Strange, E., red.; Springer International Publishing: New York, NY, USA, 2016; s. 219–237.

112. Lau, N.-S.; Matsui, M.; Abdullah, AA-A. Cyanobakterier: fotoautotrofe mikrobielle fabrikker for bærekraftig syntese av industrielle produkter. J. Biomed. Bioteknologi. 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]

113. Das, A.; Yoon, SH; Lee, SH; Kim, JY; Å, DK; Kim, SW En oppdatering om mikrobiell karotenoidproduksjon: anvendelse av nyere metabolske ingeniørverktøy. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2007, 77, 505–512. [CrossRef]

114. Mata-Gomez, LC; Montanez, JC; Mendez-Zavala, A.; Aguilar, CN Bioteknologisk produksjon av karotenoider av gjær: En oversikt. Microb. Cell Fakta. 2014. [CrossRef]

115. Liu, J.; Wang, X.; Pu, H.; Liu, S.; Kan, J.; Jin, C. Nylige fremskritt innen endofytiske eksopolysakkarider: Produksjon, strukturell karakterisering, fysiologisk rolle og biologisk aktivitet. Karbohydr. Polym. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]

116. Liu, F.; Ooi, VE; Chang, ST Frie radikaler rensende aktiviteter av sopppolysakkaridekstrakter. Life Sci. 1997, 60, 763–771. [CrossRef]

117. Jin, M.; Cai, YX; Li, JR; Zhao, H. 1,10-fenantrolin-Fe2 pluss oksidativ analyse av hydroksylradikal produsert av H2O2/Fe. Prog. Biochem. Biofys. 1996, 23, 553–555.

118. Chen, B.; Du, W.; Huang, J.; Yu, Y.; Chen, W. Isolasjons- og antioksidantegenskaper til det ekstracellulære polysakkaridet fra Rhodella reticulata. World J. Microbiol. Bioteknologi. 2010, 26, 833–840. [CrossRef]

119. Cirulis, JT; Scott, JA; Ross, GM Håndtering av oksidativt stress av mikroalger. Kan. J. Physiol. Pharmacol. 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]

120. Hassan, HM Cytotoksisitet av oksyradikaler og utviklingen av superoksiddismutaser. I oksygen, genuttrykk og cellulær funksjon; Massaro, D., Clerch, L., red.; Marcel Dekker: New York, NY, USA, 1997.

121. Bruno-Barcena, JM; Azcarate-Peril, MA; Hassan, HM Rollen til antioksidantenzymer i bakteriell motstand mot organiske syrer. Appl. Environ. Microbiol. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]

122. Rahman, K. Studier på frie radikaler, antioksidanter og kofaktorer. Clin. Interv. Aldring 2007, 2, 219–236.

123. Abbott, DA; Suir, E.; Duong, GH; de Hulster, E.; Pronk, JT; van Maris, AJ Catalase-overekspresjon reduserer melkesyreindusert oksidativt stress i Saccharomyces cerevisiae. Appl. Environ. Microbiol. 2009, 75, 2320–2325. [CrossRef]

124. Shao, N.; Beck, CF; Lemaire, SD; Krieger-Liszkay, A. Fotosyntetisk elektronkamerat påvirker H2O2-signalering ved inaktivering av katalase i Chlamydomonas reinhardtii. Planta 2008, 228, 1055–1066. [CrossRef]

125. EU-kommisjonen. Forbud mot dyreforsøk. Tilgjengelig på nettet: https://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/animal-testing_no (åpnet 14. april 2019).

126. Gao, Q.; Garcia-Pichel, F. Mikrobielle ultrafiolette solkremer. Nat. Rev. Microbiol. 2011, 9, 791–802. [CrossRef]

127. Plonka, PM; Grabacka, M. Melaninsyntese i mikroorganismer-bioteknologiske og medisinske aspekter. Acta Biochim. Pol. 2006, 53, 429–443.

128. Nosanchuk, JD; Stark, RE; Casadevall, A. Soppmelanin: Hva vet vi om struktur? Front. Microbiol. 2015. [CrossRef]

129. Sansinenea, E.; Ortiz, A. Melanin: en fotobeskyttelse for Bacillus thuringiensis-baserte biopesticider. Bioteknologi. Lett. 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]

130. Matsui, K.; Nazifi, E.; Hirai, Y.; Wada, N.; Matsugo, S.; Sakamoto, T. Det cyanobakterielle UV-absorberende pigmentet scytonemin viser radikalfjernende aktivitet. J. Gen. Appl. Microbiol. 2012, 58, 137–144. [CrossRef]

131. Garcia-Pichel, F.; Sherry, ND; Castenholz, RW Bevis for en ultrafiolett solkrem rolle av det ekstracellulære pigmentet scytonemin i den terrestriske cyanobakterien Chlorogloeopsis sp. Photochem. Fotobiol. 1992, 56, 17–23. [CrossRef]

132. Rastogi, RP; Sonani, RR; Madamwar, D. Cyanobakteriell solkrem scytonemin: rolle i fotobeskyttelse og biomedisinsk forskning. Appl. Biochem. Bioteknologi. 2015, 176, 1551–1563. [CrossRef]

133. Darshan, N.; Manonmani, HK Prodigiosin, og dets potensielle bruksområder. J. Food Sci. Teknol. 2015, 52, 5393–5407. [CrossRef]

134. Duran, N.; Justo, GZ; Duran, M.; Brocchi, M.; Cordi, L.; Tasic, L. Fremskritt i Chromobacterium violaceum og egenskapene til violacein - Dens viktigste sekundære metabolitt: En gjennomgang. Bioteknologi. Adv. 2016, 34, 1030–1045. [CrossRef]

135. Colabella, F.; Moline, M.; Libkind, D. UV-solkremer av mikrobiell opprinnelse: cyklosporin og mykosporinlignende aminosyrer. Nylig Pat. Bioteknologi. 2014, 8, 179–193. [CrossRef]

136. Khosravi, S.; Khodabandeh, S.; Agh, N.; Bakhtiarian, M. Effekter av saltholdighet og ultrafiolett stråling på bioakkumulering av mycosporin-lignende aminosyrer i Artemia fra Lake Urmia (Iran). Photochem. Fotobiol. 2013, 89, 400–405. [CrossRef]

137. Gorbushina, AA; Whitehead, K.; Dornieden, T.; Niesse, A.; Schulte, A.; Hedges, JI Svarte soppkolonier som overlevelsesenheter: hyfal cyklosporin syntetisert av steinlevende mikrokoloniale sopp. Kan. J. Bot. 2003, 81, 131–138. [CrossRef]

138. Gillbro, JM; Olsson, MJ Melanogenesen og mekanismene til hudlysende midler, eksisterende og nye tilnærminger. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]

139. Smit, N.; Vilanova, J.; Pavel, S. Jakten på naturlige hudblekingsmidler. Int. J. Mol. Sci. 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]

140. Pillaiyar, T.; Manickam, M.; Namasivayam, V. Hudblekingsmidler: medisinsk kjemiperspektiv av tyrosinasehemmere. J. Enzyme Inhib Med. Chem. 2017, 32, 403–425. [CrossRef]

141. Pillaiyar, T.; Namasivayam, V.; Manickam, M.; Jung, SH Hemmere av melanogenese: En oppdatert gjennomgang. J. Med. Chem. 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]

142. Ha, TJ; Yang, MS; Jang, DS; Choe, SU; Park, GH Hemmende aktiviteter av flavanonderivater isolert fra Sophora flavecens for melanogenese. Okse. Koreansk Chem. Soc. 2001, 22, 97–99.

143. Parvez, S.; Kang, M.; Chung, HS; Cho, C.; Hong, MC; Shin, MK Undersøkelse og mekanisme for huddepigmenterende og lysende midler. Phytother. Res. 2006, 20, 921–934. [CrossRef]

144. Rosfarizan, M.; Mohd, SM; Nurashikin, S.; Madihah, MS; Arbakariya, BA Kojic acid: Anvendelser og utvikling av fermenteringsprosess for produksjon. Biotech. Mol. Biol. 2010, 5, 24–37.

145. Ortiz-Ruiz, CV; Berna, J.; Tudela, J.; Varon, R.; Garcia-Canovas, F. Virkning av ellaginsyre på melaninbiosynteseveien. J. Dermatol. Sci. 2010, 5, 24–37. [CrossRef]

146. Ventura, J.; Belmares, R.; Aguilera-Carbo, A.; Gutiérrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. Sopp biologisk nedbrytning av tanniner fra kreosotbusk (Larrea tridentata) og tjærebusk (Fluorensia cernua) for produksjon av gallisk og ellaginsyre. Food Technol. Bioteknologi. 2008, 46, 213–217.

147. Sepúlveda, L.; Ascacio, A.; Rodríguez-Herrera, R.; Aguilera-Carboó, A.; Aguilar, CN Ellaginsyre: Biologiske egenskaper og bioteknologisk utvikling for produksjonsprosesser. Afr. J. Biotechnol. 2011, 10, 4518–4523.

148. Breathnach, AC; Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Zina, G. Azelainsyreterapi ved pigmentforstyrrelser. Clin. Dermatol. 1989, 7, 106–119. [CrossRef]

149. Sieber, MA; Hegel, JK Azelainsyre: Egenskaper og virkemåte. Skin Pharmacol. Physiol. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]

150. Breathnach, AS Melaninhyperpigmentering av hud: melasma, aktuell behandling med azelainsyre og andre terapier. Cutis 1989, 7, 106–119.

151. Usuki, A.; Ohashi, A.; Sato, H.; Ochiai, Y.; Ichihashi, M.; Funasaka, Y. Den hemmende effekten av glykolsyre og melkesyre på melaninsyntese i melanomceller. Exp. Dermatol. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]

152. Zhang, ZY; Jin, B.; Kelly, JM Produksjon av melkesyre fra fornybare materialer av Rhizopus fungi. Biochem. Eng. J. 2007, 35, 251–263. [CrossRef]

153. Liu, X.; Liu, F.; Liu, S.; Li, H.; Ling, P.; Zhu, X. Poly-gamma-glutamat fra Bacillus subtilis hemmer tyrosinaseaktivitet og melanogenese. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2013, 97, 9801–9809. [CrossRef]

154. Mohorˇciˇc, M.; Friedrich, J.; Renimel, I.; André, P.; Mandin, D.; Chaumont, J.-P. Produksjon av melaninblekende enzym av soppopprinnelse og dets anvendelse i kosmetikk. Bioteknologi. Bioprosess. Eng. 2007, 12, 200–206. [CrossRef]

155. Antonopoulou, I.; Varriale, S.; Topakas, E.; Rova, U.; Christakopoulos, P.; Faraco, V. Enzymatisk syntese av bioaktive forbindelser med høyt potensial for kosmetisk anvendelse. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2016, 100, 6519–6543. [CrossRef]

156. Sugimoto, K.; Nomura, K.; Nishimura, T.; Kiso, T.; Sugimoto, K.; Kuriki, T. Synteser av alfa-arbutin-alfa-glykosider og deres hemmende effekter på human tyrosinase. J. Biosci. Bioeng. 2005, 99, 272–276. [CrossRef]

157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Rhamnolipid-biooverflateaktive stoffer-fortid, nåtid og fremtidig scenario for det globale markedet. Front. Microbiol. 2014. [CrossRef]

158. Marchant, R.; Banat, IM Biosurfactants: en bærekraftig erstatning for kjemiske overflateaktive stoffer? Bioteknologi. Lett. 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]

159. Lang, S.; Wullbrandt, D. Rhamnose lipider-biosyntese, mikrobiell produksjon og applikasjonspotensial. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 1999, 51, 22–32. [CrossRef]

160. Haba, E.; Pinazo, A.; Jauregui, O.; Espuny, MJ; Infante, MR; Manresa, A. Fysisk-kjemisk karakterisering og antimikrobielle egenskaper av rhamnolipider produsert av Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044. Biotechnol. Bioeng. 2003, 81, 316–322. [CrossRef]

161. Piljac, G.; Piljac, T. Bruk av rhamnolipider i sårheling, behandling av brannsjokk, aterosklerose, organtransplantasjoner, depresjon, schizofreni og kosmetikk. US patent nr. US7262171B1. 2000.

162. Tuli, HS; Chaudhary, P.; Beniwal, V.; Sharma, AK Mikrobielle pigmenter som naturlige fargekilder: nåværende trender og fremtidsperspektiver. J. Food Sci. Tech. 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]

163. Caro, Y.; Venkatachalam, M.; Lebeau, J.; Fouillaud, M.; Dufossé, L. Pigmenter og fargestoffer fra trådformede sopp. Fungal Metab. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; Grigoletto, TL; Abreu, LM; Guimarães, LH; Santos, C.; Galvão, LR; Cardoso, PG Produksjon og kjemisk karakterisering av pigmenter i trådformede sopp. Mikrobiologi 2016, 162, 12–22.

165. Rao, N.; Prabhu, M.; Xiao, M.; Li, WJ Sopp- og bakteriepigmenter: Sekundære metabolitter med bred anvendelse. Front. Microbiol. 2017. [CrossRef]

166. Kuddus, M.; Singh, P.; Thomas, G.; Al-Hazimi, A. Nylig utvikling innen produksjon og bioteknologiske anvendelser av C-phycocyanin. Biomed. Res. Int. 2013. [CrossRef] [PubMed]

167. Nicoletti, M. Microalgae Nutraceuticals. Foods 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Graverholt, OS; Eriksen, NT Heterotrofe høy-celletetthet fed-batch og kontinuerlige andre kulturer av Galdieria sulphuraria og produksjon av phycocyanin. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2007, 77, 69–75. [CrossRef]

169. Carroll, AL; Desai, SH; Atsumi, S. Mikrobiell produksjon av duft- og smaksforbindelser. Curr. Opin. Chem. Biol. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]

170. Longo, MA; Sanromán, MA Produksjon av mataromaforbindelser: mikrobielle og enzymatiske metoder. Food Technol. Bioteknologi. 2006, 44, 335–353.

171. Kempf, B.; Bremer, E. Opptak og syntese av kompatible oppløste stoffer som mikrobielle stressresponser på miljøer med høy osmolalitet. Arch. Microbiol. 1998, 170, 319–330. [CrossRef]

172. Soccol, CR; Medeiros, AB; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL Smakforbindelser produsert av sopp, gjær og bakterier. Handb. Food Prod. Manuf. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Bioflavours and dufts via sopp og deres enzymer. Soppdykkere. 2003, 13, 153–166.

174. Carrau, F.; Boido, E.; Dellacassa, E. Gjærmangfold og smaksforbindelser. I soppmetabolitter; Mérillon, JM, Ramawat, K., red.; Springer International Publishing: Cham, Sveits, 2016; s. 1–29.

175. Priefert, H.; Rabenhorst, J.; Steinbüchel, A. Bioteknologisk produksjon av vanillin. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2001, 56, 296–314. [CrossRef]

176. Kunjapur, AM; Tarasova, Y.; Prather, KLJ Syntese og akkumulering av aromatiske aldehyder i en konstruert stamme av Escherichia coli. J. Am. Chem. Soc. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]

177. Alonso-Gutierrez, J.; Chan, R.; Bath, TS; Adams, PD; Keasling, JD; Petzold, CJ Metabolisk utvikling av Escherichia coli for produksjon av limonen og perillylalkohol. Metab. Eng. 2013, 19, 33–41. [CrossRef]

178. Okino, T.; Qi, S.; Matsuda, H.; Murakami, M.; Yamaguchi, K. Nostopeptins A og B, elastasehemmere fra cyanobakterien Nostoc minutum. J. Nat. Prod. 1997, 60, 158–161. [CrossRef]

179. Georgousaki, K.; DePedro, N.; Chinchilla, A.; Aliagiannis, N.; Vicente, F.; de Castro, P.; Fotinos, S.; Genilloud, O.; Fokialakis, N. High throughput screening av mikrobiell biologisk mangfold for oppdagelsen av nye kosmetiske midler. Panta Med. 2015. [CrossRef]

180. Georgousaki, K.; Tsafantakis, N.; Cheilari, A.; Gumeni, S.; González, I.; González, V.; José, RT; Genilloud, O.; Fotinos, S.; Trougakos, I.; et al. Oppdagelse av nye kosmetiske midler fra endofytiske mikroorganismer av spansk biologisk mangfold. Planta Med. 2017. [CrossRef]

181. Sykiotis, fastlege; Bohmann, D. Stress-aktiverte cap'n'collar transkripsjonsfaktorer ved aldring og menneskelig sykdom. Sci. Signal. 2010. [CrossRef] [PubMed]

182. Wedel, S.; Manola, M.; Cavinato, M.; Trougakos, IP; Jansen-Durr, P. Målretting av proteinkvalitetskontrollmekanismer av naturlige produkter for å fremme sunn aldring. Molecules 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Morimoto, RI; Cuervo, AM Proteostase og det aldrende proteomet i helse og sykdom. J. Gerontol. En Biol. Sci. Med. Sci. 2014. [CrossRef] [PubMed]

184. Huang, L.; Chen, CH Proteasomregulatorer: aktivatorer og inhibitorer. Curr. Med. Chem. 2009, 16, 931–939. [CrossRef]

185. Peyrat, LA; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; Litaudon, M.; Stien, D. Betulinsyre, den første lupin-type triterpenoid isolert fra både en Phomopsis sp. og vertsplanten Diospyros carbonara Benoist. Chem. Biologiske dykkere. 2017. [CrossRef] [PubMed]

For mer informasjon: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501