Forfatterbidrag:SB og YEK unnfanget og utformet strukturen og innholdet i anmeldelsen. SB analyserte dataene og skrev manuskriptet. EEM, MS, HB, NM, LK og YEK bidro til skrivingen – gjennomgang og redigering. YEK ledet prosjektet. Alle forfattere har lest og godtatt den publiserte versjonen av manuskriptet.

Glykosid av cistanche kan også øke aktiviteten til SOD i hjerte- og levervev, og redusere innholdet av lipofuscin og MDA i hvert vev betydelig, effektivt rense ulike reaktive oksygenradikaler (OH-, H₂O₂, etc.) og beskytte mot DNA-skader forårsaket av OH-radikaler. Cistanche-fenyletanoidglykosider har en sterk renseevne for frie radikaler, en høyere reduserende evne enn vitamin C, forbedrer aktiviteten til SOD i sædsuspensjon, reduserer innholdet av MDA og har en viss beskyttende effekt på sædmembranfunksjonen. Cistanche-polysakkarider kan øke aktiviteten til SOD og GSH-Px i erytrocytter og lungevev hos eksperimentelt senescent mus forårsaket av D-galaktose, samt redusere innholdet av MDA og kollagen i lunge og plasma, og øke innholdet av elastin, har en god rensende effekt på DPPH, forlenger hypoksitiden hos eldre mus, forbedrer aktiviteten til SOD i serum og forsinker den fysiologiske degenerasjonen av lunge hos eksperimentelt eldre mus. Med cellulær morfologisk degenerasjon har eksperimenter vist at Cistanche har den gode antioksidantevnen og har potensial til å være et medikament for å forebygge og behandle aldringssykdommer. Samtidig har echinacoside i Cistanche en betydelig evne til å rense DPPH-frie radikaler og har evnen til å rense reaktive oksygenarter og forhindre frie radikal-indusert kollagen-nedbrytning, og har også en god reparasjonseffekt på anionskader av tymin frie radikaler.

Klikk på Cistanche Tablets fordeler

【For mer informasjon:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Finansiering:Denne forskningen ble finansiert av OCP Phosboucraâ Foundation, Laâyoune, Marokko, stipend nr. PR008.

Uttalelse fra institusjonell revisjonskomité:Ikke aktuelt.

Erklæring om informert samtykke:Ikke aktuelt.

Datatilgjengelighetserklæring:Datadeling gjelder ikke for denne artikkelen, da ingen datasett ble generert eller analysert under denne studien.

Interessekonflikter:Forfatterne erklærer at forskningen ble utført i fravær av kommersielle eller økonomiske forhold som kan tolkes som potensielle interessekonflikter.

Referanser

1. Plantecelleteknologi – din partner innen plantevevskultur. Anvendelse av plantecelleteknologi i kosmetikkindustrien. Tilgjengelig på nett:

2. Forrangsforskning. Plantekstrakter markedsstørrelse for å nå rundt USD 22,49 milliarder innen 2030.

3. Forrangsforskning. Markedsstørrelse for planteekstrakter verdt rundt USD 22,49 milliarder innen 2030.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Plantestamceller i kosmetikk: nåværende trender og fremtidige retninger. Future Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Slavov, A.; Vasileva, I.; Pavlov, A. Plantecellekultur som fremvoksende teknologi for produksjon av aktive kosmetiske ingredienser. Eng. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente-Garza, CA; García-Lara, S. In vitro plantevevskultur: midler for produksjon av biologiske aktive forbindelser. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Fremskritt i plantebioteknologiske tilnærminger for forplantning og produksjon av bioaktive forbindelser. J. Ethnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Miljøbelastninger på hudaldring. Mekanistisk innsikt. Front. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Yousef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. Anatomi, hud (integument), epidermis; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. Molekylære mekanismer for hudaldring og antialdringsmetoder. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalak, M.; Pierzak, M.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Bioaktive forbindelser for hudhelse: En gjennomgang. Næringsstoffer 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Medfødte lymfoide celler som bor i huden – medfødte hudforesatte og regulatorer. Trender Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoska, B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Nåværende tilstand for SLC- og ABC-transportører i huden og deres forhold til svettemetabolitter og hudsykdommer. Proteomes 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Biomarkører for cellulær alderdom og hudaldring. Front. Genet. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Hudforandringer under aldring. I biokjemi og cellebiologi for aldring: del II klinisk vitenskap; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2019; Bind 91, s. 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Streubel, MK; Trost, A.; Richter, K. Oksidativt stress i aldrende menneskelig hud. Biomolecules 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, A.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, Á. Fernblock forhindrer hudcelleskade forårsaket av synlig og infrarød stråling. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Oksidasjonshendelser og hudaldring. Aldring Res. Rev. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Ultraviolet Photobiology in Dermatology. I ultrafiolett lys i menneskers helse, sykdommer og miljø; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2017; Bind 996, s. 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM Potensielle helsemessige fordeler av plantemat-avledede bioaktive komponenter: en oversikt. Foods 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmirieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, M.; Sobeh, M. Fytokjemisk profilering av bladekstraktet fra Ximenia Americana Var. Caffra og dets antioksidant-, antibakterielle og antialdringsaktiviteter in vitro og i Caenorhabditis Elegans: En kosmetisk og dermatologisk tilnærming. Oksyd. Med. Celle. Longev. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Bioaktive stoffer av planteopprinnelse 30. Håndb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU Plante- og dyrebaserte antioksidanters struktur, effektivitet, mekanismer og anvendelser: En gjennomgang. Antioksidanter 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanska, I. Bærekraftig produksjon av polyfenoler og antioksidanter av plante-in vitro-kulturer. I bioprosessering av plante-in vitro-systemer; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2018; s. 225–269.

26. Namdeo, A. Plantecellefremkalling for produksjon av sekundære metabolitter: en gjennomgang. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Bioprosessering av plantecellekulturer for masseproduksjon av målrettede forbindelser. Appl. Microbiol. Bioteknologi. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, MJ fruktkvalitet, antioksidantkapasitet og flavonoidinnhold i organisk og konvensjonelt dyrkede blåbær. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Produksjon og konstruksjon av terpenoider i plantecellekultur. Nat. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Moriana, A.; Meléndez-Martínez, AJ Effekt av vanning med regulert underskudd på kvalitetsparametre, karotenoider og fenoler av forskjellige tomatvarianter (Solanum Lycopersicum L.). Mat Res. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, B.; Rodrigo, MJ; Lado, J.; Zacarías, L. En sammenlignende fysiologisk og transkripsjonell studie av karotenoidbiosyntese i hvit og rød grapefrukt (Citrus Paradisi Macf.). Tre Genet. Genomes 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, X.; Miao, X.; Ling, TC; Show, PL Nylige fremskritt innen bioraffinering av Astaxanthin fra Haematococcus Pluvialis. Bioressur. Teknol. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Bioteknologisk produksjon av karotenoider ved bruk av lavkost-substrater er påvirket av dyrkingsparametre: En gjennomgang. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Plantepolyfenoler: kjemiske egenskaper, biologiske aktiviteter og syntese. Angew. Chem. Int. Ed. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Rocha, I.; Faria, N. Heterolog produksjon av resveratrol i bakterielle verter: nåværende status og perspektiver. World J. Microbiol. Bioteknologi. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Hall, R.; de Vos, CR; Bovy, A. Produksjon av resveratrol i rekombinante mikroorganismer. Appl. Environ. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodina, I.; Nielsen, J. Ingeniørgjær for høynivåproduksjon av stilbenoidantioksidanter. Sci. Rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gaspar, P.; Dudnik, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis for Stilbene-produksjon. I Proceedings of the 28th International Conference on Polyphenols 2016, Wien, Østerrike, 11. juli 2016; DTU Danmark: Kongens Lyngby, Danmark, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Vogt, M.; Stenzel, A.; Gätgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Konstruksjon av en Corynebacterium Glutamicum-plattformstamme for produksjon av stilbener og (2S)-flavanoner. Metab. Eng. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​B.; Liu, J. Resveratrol: En gjennomgang av plantekilder, syntese, stabilitet, modifikasjon og matapplikasjon. J. Sci. Food Agric. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Regulering av malonyl-CoA-metabolisme via syntetiske antisense-RNA-er for forbedret biosyntese av naturlige produkter. Metab. Eng. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, M.Á.; Romero, LA Bioaktivitet og biotilgjengelighet av fytoen og strategier for å forbedre produksjonen. Phytochem. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Golenioswki, M.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, en effektiv strategi for bioteknologisk produksjon av bioaktive høytilleggsverdiforbindelser i plantecellefabrikker. Molecules 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. Bioteknologisk produksjon av taxol og relaterte taksoider: nåværende tilstand og utsikter. Anti-Cancer Agents Med. Chem. Tidligere. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. Høydensitetskultur av Coptis Japonica-celler øker berberinproduksjonen. J. Chem. Teknol. Bioteknologi. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Produksjon av Podophyllotoxin av plantecellekulturer av Podophyllum Hexandrum i bioreaktor. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Lyseffekt på karotenoidproduksjon og uttrykk for karotenogenesegener i sitruskallus av fire genotyper. Acta Physiol. Anlegg. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Innsikt i antioksidantaktiviteter og anti-hudaldringspotensialet til callusekstrakt fra Centella Asiatica (L.). Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi ´nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, M.; Thiem, B. Effekt av Pentacyclic Triterpenoids-Rich Callus Extract of Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach om levedyktighet, morfologi og spredning av normale humane hudfibroblaster. Molecules 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. Trans-kanelsyre demper UVA-indusert fotoaldring gjennom hemming av AP-1 aktivering og induksjon av Nrf2-mediert antioksidantgener i humane hudfibroblaster. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW Forberedelse, karakterisering og biologiske aktiviteter av aktuelle antialdringsingredienser i et sitrus Junos Callus-ekstrakt. Molecules 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Fordelaktige effekter av Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos-ekstrakt på aldring og antioksidanter in vitro og in vivo. Toxicol. Res. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Etablering av kallus- og cellesuspensjonskulturer av Granny Smith eplefrukt og antityrosinaseaktivitet i ekstraktene deres. Sci. Hortic. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedzic, A.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Valorisering av det fotobeskyttende potensialet til fytokjemisk standardisert olivenbladekstrakt (Olea Europaea L.) i UVA-bestrålte humane hudfibroblaster. Molecules 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. En ny rolle for Ginsenoside RG3 i antialdring via mitokondrierfunksjon i ultrafiolettbestrålte humane hudfibroblaster. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Anti-aldringseffekter av Piper Cambodianum P. Fourn. Ekstrakt på normale humane dermale fibroblastceller og en sårhelingsmodell i mus. Clin. Interv. Aldring 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Fremkalling av Pueraria Candollei Var. Mirifica suspensjonsceller lover antioksidantpotensial, som antyder antialdringsaktivitet. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW Anti-aldringsaktiviteter av Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Callus Extract. Trop. J. Pharm. Res. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, H.-R.; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.-Y. Effekter av Tiarella Polyphylla D. Don Callus-ekstrakt på fotoaldring i menneskelige forhudsfibroblaster Hs68-celler. Nat. Prod. Commun. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Erstatter plantevegetative deler med calluscelleekstrakter: Kasusstudie med Woodfordia Fruticosa Kurz. – En potent ingrediens i hudpleieformuleringer. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, S.-H. Beskyttelse av UVB-indusert fotoaldring av Fuzhuan-Brick Tea Aqueous Extract via MAPK-er/Nrf2--mediert nedregulering av MMP-1. Næringsstoffer 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ou, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. De dermato-beskyttende effektene av Lucidon fra Lindera Erythrocarpa gjennom induksjon av Nrf2-mediert antioksidantgener i UVA-bestrålte humane hudkeratinocytter. J. Funksjon. Matvarer 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, H.-I.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Song, J.; Kim, J.; Shin, DS; Jo, Y.; Choi, H.; Lee, JH Anti-aldringseffekter av Leontopodium Alpinum (Edelweiss) calluskulturekstrakt gjennom transkriptomprofilering. Gener 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Antioksidant- og antialdringsaktiviteter i calluskultur fra tre risvarianter. Cosmetics 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Potensiell bruk av Amla (Phyllanthus Emblica L.) fruktekstrakt for å beskytte hudkeratinocytter mot betennelse og apoptose etter UVB-bestråling. Antioksidanter 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, MP; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) som en kilde til bioaktive forbindelser: polyfenolisk profil, cytotoksisitet og cytobeskyttende egenskaper i forskjellige cellelinjer. Front. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Forberedelse og karakterisering av callusekstrakt fra Pyrus Pyrifolia og undersøkelse av dens effekter på hudregenerering. Kosmetikk 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, M.; Petrok, G.; Osman, S.; El Raey, MA; Imbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Isolation of Myricitrin and 3,5-Di-O-Methyl Gossypetin from Syzygium Samarangense og evaluering av deres involvering i å beskytte keratinocytter mot oksidativt stress via aktivering av Nrf-2-banen. Molecules 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Mikropropagering av ingefær (Zingiber Officinale Roscoe) 'Bentong' og evaluering av dens sekundære metabolitter og antioksidantaktiviteter sammenlignet med den konvensjonelt formerte planten. Plants 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Ektopisk uttrykk for produksjon av Antocyanin Pigment 1 (PAP1) Forbedrer antioksidant- og anti-melanogene egenskaper til Ginseng (Panax Ginseng CA Meyer) hårete røtter. Antioksidanter 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Rapa hårrotekstrakter fremmer huddepigmentering ved å modulere melaninproduksjon og -distribusjon. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petrok, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM Malvidin og cyanidinderivater fra Açai Fruit (Euterpe Oleracea Mart.) motvirker UV-A-indusert oksidativt stress i udødeliggjorte fibroblaster. J. Photochem. Fotobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello, S.; Tortora, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ En blanding av peptider og sukker avledet fra plantecellevegger øker planteforsvarets respons på stress og demper aldringsassosierte molekylære endringer i dyrkede hudceller. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sun, Z.; Park, SY; Hwang, E.; Zhang, M.; Seo, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris Lindrer UVB-bestråling indusert hudskade via hemming av MAPK/AP-1 og aktivering av Nrf2-ARE-antioksidantsystemet. J. Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulova, A.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Hill, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. A tomatstamcelleekstrakt, som inneholder antioksidantforbindelser og metallchelaterende faktorer, beskytter hudceller mot skader forårsaket av tungmetaller. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Chitosan-fremkalling av Isatis Tinctoria L. Hårete rotkulturer for å forbedre flavonoidproduktivitet og genuttrykk og relatert antioksidantaktivitet. Ind. Avlinger Prod. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, T.; Umar, S.; Mujib, A.; Sharma, MP; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Sekundær metabolisme av legemidler i planten in vitro-kulturer: strategier, tilnærminger og begrensninger for å oppnå høyere utbytte. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Park, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.-Y. Produksjon av biomasse og bioaktive forbindelser fra tilfeldige rotkulturer av Polygonum multiflorum ved bruk av Air-Lift-bioreaktorer. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Hårete rotkulturer: Et egnet biologisk system for å studere sekundære metabolske veier i planter. Eng. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Etablering av Salvia Officinalis L. Hårete rotkulturer for produksjon av rosmarinsyre. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, B.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Hårete røtter av Dracocephalum Moldavica: Rosmarinsyreinnhold og antioksidantpotensial. Acta Physiol. Anlegg. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Elite hårete røtter av Ocimum Basilicum som en ny kilde til rosmarinsyre og antioksidanter. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Shekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Sammenlignende studie av rosmarinsyreinnhold i noen planter av Labiatae-familien. Pharmacogn. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Plantevevskulturer som kilder til ingredienser for hudpleieapplikasjoner. Annu. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. Multiplisiteten av hårete rotkulturer: produktive muligheter. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Pannelugg.; Ahn, M.-A.; Lee, K.; Kim, K.; Hyun, TK Overproduksjon av antocyanin i Ginseng-hårede røtter forbedrer deres antioksidant-, antimikrobielle og anti-elastase-aktiviteter. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Sobeh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Mikropropagasjon av Opuntia og andre kaktusarter gjennom spredning av aksillærskudd: En omfattende gjennomgang. Front. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. In vitro-kultur av lavendel (Lavandula spp.) og produksjon av sekundære metabolitter. Bioteknologi. Adv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, A.; Debnath, S. Mikroformering påvirker ikke bare fruktmorfologien til blåbær (Vaccinium Angustifolium Ait.), men også dens medisinske egenskaper. I Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Canada, 17.–19. juni 2013; s. 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Suleiman, M.; Abbas, S.; Wink, M. In vitro-formering av medisinplanten Ziziphora Tenuior L. og evaluering av dens antioksidantaktivitet. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Sooriamuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; John, SST; Narayanan, R. Lysindusert produksjon av antidepressiva forbindelser i etiolerte skuddkulturer av Hypericum Hookerianum Wight & Arn.(Hypericaceae). Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki ´nska, H. Antioksidantaktivitet av ekstrakter fra in vitro-kulturer av Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, E.; Qouta, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. In vitro forplantning og karakterisering av fenolinnhold sammen med antioksidanter og antimikrobielle aktiviteter av Cichorium Pumilum Jacq. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehman, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. In vitro forplantning av Caralluma tuberculata og evaluering av antioksidantpotensial. Biologia (Bratisl.) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, A.; Kayat, F.; Zakaria, S.; Hamzah, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Mikropropagering av Alocasia Longiloba Miq og sammenlignende antioksidantegenskaper av etanolekstrakter fra den feltdyrkede planten, in vitro-formert og in vitro-avledet kallus. Plants 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Plantekall: Mekanismer for induksjon og undertrykkelse. Plantecelle 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, dedifferensiering, totipotens, somatisk embryogenese: Hva betyr disse begrepene i epoken med molekylær plantebiologi? Front. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Plant Cell Culture Technologies: Et lovende alternativ for å produsere høyverdi sekundære metabolitter. arabisk. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Plantecellekulturteknologi: En ny ingredienskilde. CARE 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Cellekultur: En innovativ tilnærming for produksjon av planteaktive stoffer; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Storbritannia, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Produksjon av biomasse og bioaktive forbindelser fra cellesuspensjonskulturer av Panax Quinquefolium L. og Glycyrrhiza Uralensis Fisch. I produksjon av biomasse og bioaktive forbindelser ved bruk av bioreaktorteknologi; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2014; s. 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Produksjon av Callus Culture av Onosma Bulbotrichom som aktiv farmasøytisk ingrediens. Iran. J. Pharm. Res. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Man, S.; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Produksjon av flavonoider og polysakkarid ved å legge til Elicitor i forskjellige cellulære dyrkingsprosesser av Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiol. Anlegg. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW Methyl Jasmonate Stimulerer 20-Hydroxyecdysone-produksjonen i cellesuspensjonskulturer av 'Achyranthes Bidentata'. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulova, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, J. Dolichos cellekulturekstrakt for beskyttelse mot UV-skader. Kosmettoalett 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella, S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. A Novel Engineered Dermis for in Vitro Photodamage Research. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. Aktivitets- og stabilitetsstudier av Verbascoside, en ny antioksidant, i dermo-kosmetiske og farmasøytiske aktuelle formuleringer. Molecules 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulova, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis for antirynke- og hudtoningapplikasjoner. Kosmet. Toalett. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Medisinske plantecellesuspensjonskulturer: farmasøytiske anvendelser og høyavkastningsstrategier for de ønskede sekundære metabolittene. Crit. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, N.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: Et verktøy for å berike den bioaktive sammensetningen av matvarer. Molecules 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Vasconsuelo, A.; Boland, R. Molecular Aspects of the Early Stadiums of Elicitation of Secondary Metabolites in Plants. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: Et bioteknologisk verktøy for forbedret produksjon av sekundære metabolitter i hårete rotkulturer. Eng. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman, H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Interaktive effekter av bredspektrede monokromatiske lys på fytokjemisk produksjon, antioksidanter og biologiske aktiviteter av Solanum Xanthocarpum Callus-kulturer. Molecules 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. Abiotic understreker fremkalling potenserer produktiviteten til Cardoon Calli som biofabrikker for spesialisert metabolitterproduksjon. Antioksidanter 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Gen-til-metabolitt-nettverk for biosyntese av lignaner i MeJA-fremkalte Isatis Indigotica hårete rotkulturer. Front. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Forbedring av akkumulering av bioaktive forbindelser i cellekulturer av Orostachys Cartilaginous A. Bor. gjennom fremkalling med salisylsyre og effekt av celleekstrakt på bioaktiv aktivitet. Ind. Avlinger Prod. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Elicitor-indusert produksjon av biomasse og farmasøytiske fenoliske forbindelser i cellesuspensjonskultur av daddelpalme (Phoenix Dactylifera L.). Molecules 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Durán, MDL; Zabala, MEA; Londoño, GAC-optimalisering av flavonoidproduksjon i plantecellekultur av Thevetia Peruviana fremkalt med metyljasmonat og salisylsyre. Braz. Arch. Biol. Teknol. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Methyl Jasmonate Elicitation forbedrer Glycyrrhizin-produksjonen i Glycyrrhiza Inflata hårete røtter-kulturer. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Stimulering av akkumulering av fenoliske forbindelser og antioksidantaktivitet i in vitro-kultur av Salvia Tebesana Bunge som svar på nano-TiO2 og metyljasmonatutløser. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairoum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Forbedring av stilbenforbindelser og antiinflammatorisk aktivitet av metyljasmonat og syklodekstrin fremkalt peanøtthåret rotkultur. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Fremkalling av antioksidantmetabolitter i Musa-arter in vitro skuddkultur ved bruk av sukrose, temperatur og jasmonsyre. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulering av kallusvekst og sekundære metabolitter i forskjellige thymusarter og Zataria Multiflora mikroforplantet under ZnO nanopartikler stress. Bioteknologi. Appl. Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, A.; Mohammad, S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, M.; Kamil, A.; Mashwani, Z.-R. Sølv nanopartikler fremkalt in vitro kalluskulturer for akkumulering av biomasse og sekundære metabolitter i Caralluma Tuberculata. Artif. Celler Nanomedisin Bioteknologi. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Effekt av sølv nanopartikler på produksjon av fenoliske forbindelser og biologiske aktiviteter i hårete rotkulturer av Cucumis anguria. Acta Biol. Hung. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohamed, A.; Yücesan, B.; Gürel, E.; Kausar, R.; Zia, M. CuO Nanopartikler har betydelig innflytelse på in vitro-kultur, steviolglykosider og antioksidantaktiviteter til Stevia rebaudiana Bertoni. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanopartikler med innesluttet -tokoferol: syntese, karakterisering og kontrollert frigjøring. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, A.; Lojkowska, E.; Staniszewska, I.; Malinski, E.; Szafranek, J. Identifikasjon av sekundære metabolitter i in vitro-kultur av Ammi Majus behandlet med elicitorer. I Proceedings of IV International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Tammerfors, Finland, 2.–7. juli 2000; s. 255–258.

129. Fazal, H.; Abbasi, BH; Ahmad, N.; Ali, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Bærekraftig produksjon av biomasse og industrielt viktige sekundære metabolitter i selvhelbredende cellekulturer (Prunella Vulgaris L.) fremkalt av nanopartikler av sølv og gull. Artif. Celler Nanomedisin Bioteknologi. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Z.; Tan, RX; Wu, J. Effektiv produksjon og utvinning av diterpenoid tanshinoner i Salvia Miltiorrhiza hårete rotkulturer med in situ adsorpsjon, fremkalling og semi-kontinuerlig drift. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Biotic Elicitation for Scopolamin Production by Hairy Root Cultures of Datura Metel. Mol. Biol. Res. Commun. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wong, H.; Teng, W. Effekter av fremkalling på produksjonen av saponin i cellekultur av Panax Ginseng. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Effekten av Elicitors på forbedring av Podophyllotoxin-biosyntese i suspensjonskulturer av Linum Album. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusidó, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Fremkalling av forskjellige Panax Ginseng-transformerte rotfenotyper for en forbedret ginsenosidproduksjon. Plant Physiol. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Produksjon av sekundære metabolitter fra celle- og organkulturer: strategier og tilnærminger for biomasseforbedring og metabolittakkumulering. Plantecellevevsorgankult. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Forbedring av akkumulering av rosaviner i Rhodiola Rosea L. Planter dyrket in vitro ved forløperfôring. Agronomi 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Lignan Forbedring i hårete rotkulturer av linumalbum ved bruk av koniferaldehyd og metylendioksykanelsyre. Prep. Biochem. Bioteknologi. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila, S.; Hohtola, A. Biosyntese av hyperforin og adhyperforin fra aminosyreforløpere i skuddkulturer av Hypericum Perforatum. Phytochemistry 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Forbedret produksjon av ginsenosider i suspensjonskulturer av ginseng ved middels påfyllingsstrategi. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Forbedret produksjon av koffeinsyrederivater i suspensjonskulturer av Echinacea Purpurea ved middels påfyllingsstrategi. Arch. Pharm. Res. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Forbedret Taxol-produksjon og frigjøring i Taxus Chinensis-cellesuspensjonskulturer med utvalgte organiske løsemidler og sukrosefôring. Bioteknologi. Prog. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. Oversikt og prinsipper for bioteknologi: Driverne til Omics-teknologier. I Omics-teknologier og bio-engineering; Elsevier: Amsterdam, Nederland, 2018; s. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Produksjon av plantesekundære metabolitter ved å bruke bioteknologiske verktøy. Sekund. Metab.-kilder Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Vásquez, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Cardineau, GA; Lara, SG Anvendelse av metabolsk teknikk for å forbedre innholdet av alkaloider i medisinplanter. Metab. Eng. Commun. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Bioteknologi for produksjon av plantesekundære metabolitter. Phytochem. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. Regulering av tropanalkaloidmetabolisme i planter og plantecellekulturer. I Metabolic Engineering of Plant Secondary Metabolism; Springer: Berlin/Heidelberg, Tyskland, 2000; s. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Plantecellekultur for produksjon av paklitaksel og andre taxaner. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Sekundære metabolitter av medisinplanter, 4-volumssett: Etnofarmakologiske egenskaper, biologisk aktivitet og produksjonsstrategier; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, USA, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esyanti, RR Effekt av immobilisering på cellevekst og alkaloidinnhold i celleaggregert kultur av Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, P.; Zhou, W.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. Enhancement of Chitosanase Production by Cell Immobilization of Gongronella Sp. JG. Braz. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Produksjon av Podophyllotoxin av immobiliserte cellekulturer av Juniperus Chinensis. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130-1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Studier av produksjonen av noen viktige sekundære metabolitter fra medisinplanter av plantevevskulturer. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, MA; Ahmad, IZ; Saeed, M. Current Approaches toward Production of Secondary Plant Metabolites. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154. Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Living Between Two Worlds: To-fase kultursystemer for produksjon av plantesekundære metabolitter. Crit. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML Effekten av Ajmalicine-spiking og harpikstilsetningstid på produksjonen av indolalkaloider fra Catharanthus Roseus-cellekulturer. Bioteknologi. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komaraiah, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Forbedret produksjon av Plumbagin i immobiliserte celler av Plumbago Rosea ved fremkalling og in situ adsorpsjon. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

157. Kvana, M.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In situ, utvinningsstrategi påvirker bensofenanthridin-alkaloidproduksjonsflukser i suspensjonskulturer av Eschscholtzia Californica. Bioteknologi. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, M.-B.; Zhang, W.; Ruan, C. Betydelig forbedret Taxuyunnanine C-produksjon i cellesuspensjonskulturer av Taxus Chinensis ved prosessintensivering av gjentatt fremkalling, sukrosemating og in situ-adsorpsjon. World J. Microbiol. Bioteknologi. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Forbedret antrakinonproduksjon fra adsorbentbehandlede Morinda Elliptica-cellesuspensjonskulturer i produksjonsmediumstrategi. Prosess Biochem. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

Ansvarsfraskrivelse/utgivers merknad:Uttalelsene, meningene og dataene i alle publikasjoner er utelukkende de fra den enkelte forfatter(e) og bidragsyter(e) og ikke fra MDPI og/eller redaktøren(e). MDPI og/eller redaktøren(e) fraskriver seg ansvar for enhver skade på personer eller eiendom som følge av ideer, metoder, instruksjoner eller produkter som refereres til i innholdet.

【For mer informasjon:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】