Resultater og diskusjon: Enkeltfaktoroptimalisering, flyktig aromaprofilering og metabolomikk av Cistanche Musalais

 

 

 

2 Resultater og analyse

 

2.1 Enkeltfaktoreksperimenter for Cistanche Musalais

Enkeltfaktorresultatene er vist i figur 2. Løselige faste stoffer gjenspeiler primært det totale restsukkeret og andre løselige stoffer som er igjen etter fermentering. Jo høyere det opprinnelige sukkernivået er, desto høyere er det endelige gjenværende oppløselige faststoffet. Ved det samme innledende sukker- og Cistanche-tilsetningsnivået var løselige faste stoffer ved 25 grader litt lavere enn ved 22 grader og 28 grader. Gjærgjæringsaktiviteten er høyere ved 25 grader, og bruker mer sukker; På grunn av den høye sukkerbasislinjen kan det imidlertid hende at dette forbruket ikke reduserer totalen vesentlig, og gir bare små forskjeller. Feilstreker overlappet mellom 3 %, 5 % og 7 % Cistanche-tilsetningsgruppene, uten signifikante forskjeller, noe som indikerer at Cistanche-tilsetningsnivået har en ubetydelig effekt på totalt løselige faste stoffer, som hovedsakelig påvirkes av innledende sukker.

 

Cistanche-msalais

 

 

Oppføringsdetaljer for Cistanche Musalais

Supportive Service Of Wecistanche - Den største cistanche-eksportøren i Kina:
E-post:wallence.suen@wecistanche.com

 

 

Alkoholinnhold er den mest direkte indikatoren på gjæringseffektivitet; Etanol er hovedproduktet av gjærsukkergjæring [10]. 32-graders Bx-gruppen viste betydelig høyere alkoholinnhold enn 26-graders Bx- og 29-graders Bx-gruppene, ettersom høyere initialsukker gir mer fermenterbart substrat for å produsere mer alkohol. Under 25 grader nådde alkoholinnholdet en topp over nesten alle innledende sukker- og Cistanche-tilsetningskombinasjoner, i samsvar med LI et al. [11]. For lav temperatur (22 grader) undertrykker gjær, bremser eller fullfører ufullstendig gjæring; for høy (28 grader) kan føre til for tidlig gjærnedgang eller flere biprodukter, noe som også reduserer det endelige etanolutbyttet. Ved 25 grader oppnådde 7 % Cistanche-tilsetning det høyeste alkoholinnholdet, noe som tyder på at visse Cistanche-bestanddeler kan fremme gjærvekst og gjæringskraft.

Total surhet påvirker munnfølelsen og stabiliteten. Syrer stammer fra råvarer og mikrobiell metabolisme under fermentering. Overflødig surhet gir skarpe, eddikaktige toner og bør kontrolleres ved lavere nivåer [12]. Total surhet ved 22 grader var betydelig høyere enn ved 25 grader og 28 grader fordi 22 grader er suboptimalt for melkesyrebakterier (LAB). Lave temperaturer hemmer sterkt LAB-vekst og metabolisme, noe som gjør malolaktisk gjæring (MLF) veldig langsom, ufullstendig eller til og med ikke igangsatt; følgelig forblir eplesyre ukonvertert, noe som øker målt total surhet. I kontrast er 25–28 grader et gunstig område for MLF. LAB er svært aktive her og kan raskt og grundig konvertere eplesyre til melkesyre [13], noe som resulterer i lavere total surhet. Effektene av initial sukker og Cistanche-tilsetning på total surhet var mindre konsistente totalt sett; Imidlertid ga 25 grader med 7 % tilsetning vanligvis en moderat surhet. For lav surhet fører til en flat gane; for høy gir skarphet-moderering er best.

Totalt antall flavonoider og totale polyfenoler måler direkte funksjonelle bestanddeler og antioksidantkapasitet, hovedsakelig hentet fra den tilsatte Cistanche. Cistanche-tilsetningsnivået var mest innflytelsesrik: ved de fleste innledende sukker og temperaturer hadde 7 %-gruppen det høyeste flavonoid- og polyfenolinnholdet, etterfulgt av 5 % og 3 %. Dette viser at økning av Cistanche er den mest effektive måten å forbedre produktfunksjonaliteten på. Ytelse ved 25 grader var overlegen for disse indeksene. Høyere temperatur (28 grader) kan forårsake delvis nedbrytning/oksidasjon av varmesensitive aktive stoffer; lavere temperatur (22 grader) kan hindre full ekstraksjon fra matrisen. For å maksimere helseverdien (totalt antall flavonoider og polyfenoler), er en 7 % Cistanche-tilsetning ved en mild 25 graders gjæring nøkkelen for å beskytte og effektivt trekke ut disse komponentene.

Oppsummert var optimale forhold på tvers av behandlinger: innledende sukker 32 grader Bx, 25 graders gjæring og 7 % Cistanche-tilsetning. Dette balanserer gjæringseffektivitet, produktkvalitet og funksjonalitet. Dette skiller seg fra ABUDUREHEMAN et al. [14]. TANG et al. [15] funnet kjernefunksjonelle mikrober i tradisjonelle Musalais inkluderer Blautia, Leuconostoc, Lactiplantibacillus, Rhodococcus og Thermoascus; Thermoascus driver syntese av nøkkelmetabolitter (glycin, acetamid, monacolin K, etc.). En åpen gjæring med høyt sukker introduserer flere karbonkilder, aktiverer sekundær metabolisme, og sukkernivået påvirker direkte fenoliske biosyntetiske ruter (KEGG-anriket shikimat-vei). Wen Xiaoli [16] observerte at fenylpropanoid (shikimat)-veier fremmer akkumulering av fenoliske forløpere. Et miljø med høyt sukkerinnhold (32 grader Bx) fremmer osmotolerant gjær (f.eks. Saccharomyces) og undertrykker forurensninger. Mens tradisjonell Musalais er avhengig av Thermoascus for fenolsyntese [15], i Cistanche kan Musalais gjær direkte bruke fenoliske forløpere fra Cistanche for å effektivt produsere fenoler [17]. Derfor er de optimale forholdene 32 grader Bx, 25 grader og 7 % Cistanche. Under disse var løselige faste stoffer (21,9 ± 1,1) %, alkohol (12,6 ± 0,6) % vol, total surhet (3,82 ± 0,19) g/L, totalt flavonoider (0,80 ± 0,01) g/L og polyfenoler (0,60 ± g/l)

2.2 Flyktige smaksforbindelser i Cistanche Musalais

Den forbedrede nettbaserte tilleggstabell 1 viser representative aromakomponenter og relative innhold i Cistanche Musalais vs. Control Musalais. Totalt ble 38 aromaforbindelser identifisert: 24 estere, 6 alkoholer, 2 ketoner, 2 aldehyder og andre.

Estere er primære bidragsytere til fruktige og vinøse aromaer, inkludert etylacetat, isoamylacetat og isoamylfenylacetat. Etylacetat (fruktig, søt) var mye høyere i gruppe B (7 % Cistanche) på 6,418 % vs. gruppe A (kontroll) på 2,417 %. Dietyloksalat (aromatisk) ble kun påvist i gruppe B (0,521%). Estere dannes fra organiske syrer og alkoholer via esteraser [18]. Cistanche kan levere stoffer som fremmer esteraseaktivitet eller enzymer som deltar i reaksjonene; dens tilsetning kan fremme vekst av esterproduserende gjær samtidig som den undertrykker ikke-esterprodusenter. I forhold til A viste B syv nye estere: 2-etylheksylakrylat, etylbenzoylformiat, etylsalisylat, heksylvalerat, etylmyristat, etylpalmitoleat og etyloleat. Disse oppsto sannsynligvis som spesifikke fett- eller aromatiske syrer fra Cistanche tjente som substrater for mikrobiell forestring. Visse aktive komponenter (f.eks. fenyletanoidglykosider, PhGs) kan spaltes til sukker og aglykoner; aglykonene er ustabile og omdannes videre mikrobielt eller ikke-enzymatisk til fettsyrer som reagerer med alkoholer for å danne estere [19]. Isoamyl phenylacetate er en nøkkelkilde til honning og floral noter med lav terskel; etylpalmitat pluss etyloktanoat danner sammensatte frukt-fettaromaer [20]. Lavmolekylære estere og aldehyder er kritiske sekundære aromaprodukter som dannes under gjæring [21] og forbedrer Musalais' fruktighet.

Alkoholer som isobutanol og isoamylalkohol er store smaksbidragsytere. Etanol, isoamylalkohol og isobutanol var alle lavere i gruppe B enn A. Reduksjonen i etanol fulgte med økningen i estere, noe som indikerer at karbonfluks skiftet fra alkoholakkumulering til esterbiosyntese - en gunstig retning. Høyere alkoholer stammer hovedsakelig fra forgrenet aminosyrekatabolisme (valin, leucin, isoleucin) via Ehrlich-veien [22]. Deres reduksjon kan indikere at Cistanche undertrykte overvekst av relaterte stammer eller modulerte aminosyrefluks. Mens moderat høyere alkoholer kan tilføre aroma/kropp, har mange lave terskler og noen smaker bittert; isobutanol har en sterk bitterhet [23]. Dermed kan lavere høyere alkoholer i Cistanche Musalais forbedre drikkekomforten.

Aldehyder, ketoner og andre forbindelser ble også påvist, men med lavere mangfold og relativ overflod. Gruppe B viste 2,5-dihydroksyacetofenon (søtt, floral), fraværende i A, sannsynligvis på grunn av mikrobiell nedbrytning av Cistanche PhGs (f.eks. echinacoside, acteosid).

GC – MS indikerer at tilsetning av Cistanche endret den flyktige profilen betydelig. Etylacetat (fruktig, søt) og etylpalmitat (fruktig-fett) var de viktigste bidragsyterne til den forbedrede fruktigheten, med 6,42 % og 3,75 % i Cistanche Musalais vs. 2.42 % og 1,18 % i tradisjonelle. Isobutanol (bitter) falt fra 3,98 % til 2,11 %, noe som reduserer bitterheten og forbedret balansen. Nye aromaforbindelser som 2,5-dihydroksyacetofenon stammer sannsynligvis fra mikrobiell nedbrytning av PhGs, og diversifiserer aromaen. Totalt sett styrte Cistanche-tilsetningen gjæringen mot å produsere mer ønskelige aromaestere.

2.3 Metabolomikk av Cistanche Musalais

 

2.3.1 Ikke-flyktige metabolitter

UPLC–MS/MS med et lokalt bibliotek pluss offentlige databaser identifiserte 11 klasser av forbindelser. Som vist i figur 3-a, var organiske heterosykliske stoffer mest tallrike (28,1 % av identifisert innhold), etterfulgt av organiske syrer og derivater (18,6 %), lipider og lipidlignende molekyler (13,8 %), benzenoider (12,3 %), organiske oksygenforbindelser (9,6 %) og polyketider, alkaloider og benzylforbindelser (0,7 %). derivater (4,2%), organiske nitrogenforbindelser (3,3%), nukleosider/nukleotider og analoger (1,9%) og andre (0,8%).

Organiske heterosykler er viktige for vinsmak; blant frukt-vinkomponenter er furaner og pyraziner sentrale luktstoffer [24]. Pyraziner har lave terskler og sterk lukt; furaner er lavtkokende, svært flyktige lipofile som er kritiske for smaksdannelse og potensielt gunstige for helsen [25]. Organiske syrer og derivater er essensielle for vin; deres nivåer og typer påvirker sterkt smak, farge og stabilitet [26]. Organiske syrer oppstår fra trikarboksylsyresyklusen (TCA): glukose danner pyruvat enzymatisk; pyruvat omdannes til acetyl-CoA av pyruvatdehydrogenase, deretter til TCA-mellomprodukter (citrat, malat, succinat). I tillegg oppdaget vi trigonelline (hypolipidemisk og hypoglykemisk) og crocin (antikreft, anti-inflammatorisk, antioksidant, hepatobeskyttende/koleretisk og antidiabetisk aktivitet).

 

2.3.2 PCA og OPLS-DA for ikke-flyktige metabolitter

Figur 3-b viser PCA-skåre for kontroll (A) og 7 % Cistanche (B) basert på alle identifiserte metabolitter. To hovedkomponenter forklarte ~57,8 % av total varians (PC1 42.8%, PC2 15.2%), noe som indikerer at de fanger opp mest original informasjon og representerer nøkkelfunksjoner blant behandlingene [27]. Prøver gruppert i grupper; A og B skilte seg tydelig fra hverandre, noe som indikerer betydelige metabolomiske forskjeller på grunn av Cistanche-tilsetning og god systemstabilitet/datapålitelighet.

Figur 3-e viser OPLS-DA ytterligere diskriminerende grupper og screening av differensielle metabolitter. Alle poeng falt innenfor 95 % konfidensintervallet; A og B var tydelig atskilt, noe som indikerer betydelige forskjeller i sammensetning og forekomst av ikke-flyktige metabolitter. Variabler og klasseetiketter ble partisjonert og projisert for diskriminering, og støttet pålitelighet [28]. Figur 3-c viser et PLS-DA-scoreplott som behandler identifiserte ikke-flyktige stoffer som avhengige variabler og behandlinger som uavhengige variabler, og avslører et lignende mønster som PCA med tettere gruppegruppering. I permutasjonstesting (200 ganger) var modellberegningene R2Y=1 og Q2=0.866; etter 200 permutasjoner krysset R2 og Q2 den positive y-aksen med verdier på venstre side mindre enn høyre side, noe som indikerer gyldighet. I PLS-DA ble VIP-verdier brukt for å skille metabolittbidrag på tvers av behandlinger [30]. S-plottbelastningene identifiserte funksjoner med store intergruppeforskjeller; større avstand indikerer større betydning. OPLS-DA diskriminerte effektivt de to vinene, og ga et sterkt grunnlag for nedstrøms metabolittvalg.

 

2.3.3 Hierarkisk klynging av sentrale differensielle metabolitter

Basert på OPLS-DA med VIP > 1 og P < 0,05, ble 230 differensialforbindelser identifisert: 125 oppregulerte og 64 nedregulerte. På grunn av det store antallet ble de 50 beste i overflod brukt til hierarkisk klynging. Varmekartet (Figur 3-g) viser hver rad som en metabolitt og hver kolonne som en prøve [31]; rød indikerer høyere uttrykk, blå lavere. De tre replikatene per gruppe viste lignende farger, noe som indikerer god reproduserbarhet og konsistente trender. Figur 3-g antyder at druejuice under mikrobiell virkning produserer aminosyrer, glukose, organiske syrer, terpener, etc. Tang et al. [15] detaljert den naturlige rekkefølgen av mikrobielle samfunn (f.eks. Aspergillus, Gluconobacter, gjær) og tilsvarende metabolittendringer under Musalais-gjæring. Gruppe A er på linje med denne iboende mikrobielle balansen. Cistanche er imidlertid ikke inert; dets bioaktive stoffer (f.eks. PhGs) kan ha antimikrobielle effekter [32], og forstyrre den eksisterende balansen. Mogrosideisomerer (f.eks. isomerer av mogrol), crocin B, andrographolide, etc., var høyere i B (7%) og lavere i A, sannsynligvis fordi Cistanches potente antioksidantkapasitet (rik på PhG) ga et antioksidativt miljø som reduserte oksidativ nedbrytning av disse molekylene. L(+)-ornitin, L(+)-citrullin og vitamin B7 (biotin) var lavere i B, men høyere i A, noe som tyder på at den eksterne faktoren (Cistanche) forstyrret den opprinnelige mikrobielle balansen, undertrykte visse funksjonelle stammer og endret mainstream metabolske retninger. Dette indikerer potensielle funksjonelle fordeler med Cistanche Musalais sammenlignet med tradisjonell Musalais.

 

2.3.4 Funksjonelle komponenter

Umålrettet metabolomikk belyste ikke bare smaksdannelsesmekanismer, men identifiserte også berikede bioaktive komponenter, og ga et direkte kjemisk grunnlag for produktutvikling. Trigonellin ble signifikant oppregulert i den eksperimentelle gruppen, med dokumenterte hypoglykemiske, hypolipidemiske og nevrobeskyttende effekter [33]. Crocin, en potent vannløselig antioksidant, økte også betydelig, kjent for antiinflammatoriske, anxiolytiske og potensielle antikreftaktiviteter. Under den optimale prosessen (7 % ved 25 grader) nådde totalt antall flavonoider og totalt fenoler henholdsvis 0,80 g/l og 0,60 g/l, noe som markant forbedret antioksidantkapasiteten sammenlignet med tradisjonelle produkter. Disse anrikningene stammer fra Cistanche (f.eks. PhGs, polysakkarider) [4–5] og kan også reflektere mikrobiell biotransformasjon og anrikning under gjæring.

 

2.3.5 Vulkanplott av sentrale differensielle metabolitter

Vulkanplottet visualiserer endringer i metabolittoverflod. Ved å bruke VIP Større enn eller lik 1 og P < 0,05, ble 230 differensialforbindelser identifisert: 125 oppregulerte og 64 nedregulerte (Figur 3-e). X-aksen er log2 ganger endring, og y-aksen er −log10 P. Signifikant oppregulerte metabolitter med FC Større enn eller lik 1 og P < 0,05 er røde; signifikant nedregulert med FC Mindre enn eller lik 1 og P < 0,05 er blå; ubetydelige er grå. Topp 20 med de mest uttalte endringene under P < 0,05 og VIP > 1 er listet opp i tilleggstabell 2. Den største oppreguleringen var et glykosidderivat (Log2FC=2.60; FC=6.06), et fenylethanoid-glykosid-avledet glykosid, som sterkt antyder en karakteristisk konstituentkonstituent. Cistanche er rik på PhGs som echinacoside og acteosid; under fermentering kan disse prototypene gjennomgå hydrolyse, glykosyloverføring eller omorganisering for å generere slike nye glykosidderivater. Differensielle metabolitter inkluderte flere aminosyrer og derivater, f.eks. (E)-N5-(1-aminoetyliden)-L-ornitin (Log2FC=1.76, opp), trigonelloxazolidin (Log2FC=1.80, opp), og metioninetylester (Log2FC},-{41} ned og T-4FC,-41,6},-4 et al. [15], som bemerket aminosyrebiosyntese i miljøer med høyt sukkerinnhold underbygger smaksdannelsen. Cistanche-tilsetning kan gi ekstra nitrogen eller forløpere, ikke bare øke fluksen gjennom aminosyreveier, men styre mot spesifikke konverteringer som gir karakteristiske aminosyreavledede smaksforbindelser.

 

2.3.6 KEGG-baneberikelse

KEGG-anriking av differensielle nøkkelmetabolitter (figur 3-i) fremhevet de 20 beste veiene: ABC-transportører, biosyntese av aminosyrer, argininbiosyntese, purinmetabolisme, aminoacyl-tRNA-biosyntese, D-aminosyremetabolisme, tryptofanmetabolisme, metabolisme av arginin og altropan/piper i altropoid/altropidvei, biosyntese, cyanoaminosyremetabolisme, flavonoidbiosyntese, 2-oksokarboksylsyremetabolisme, glukosinolatbiosyntese, flavon- og flavonolbiosyntese, koffeinmetabolisme, lysindegradering, alanin/aspartat/glutamatmetabolisme, pyrimidinmetabolisme og vitamin B6. Farger: blå for metabolisme; oransje for behandling av miljøinformasjon; grønn for behandling av genetisk informasjon. Blant disse var ABC-transportører, biosyntese av aminosyrer, argininbiosyntese, purinmetabolisme, aminoacyl-tRNA-biosyntese og D-aminosyremetabolisme signifikante, med anrikede forbindelser på henholdsvis 138, 128, 23, 101 og 52. ABC-transportører formidler kjernetransmembrantransport i mikrobielle membraner, drevet av ATP-hydrolyse for å flytte substrater (sukker, aminosyrer, antibiotika), som direkte påvirker næringsinnsamling og miljøtilpasning [34]. Gluconobacter tar effektivt opp etanol og driver eddikfermentering via ABC-transportører [35]. Aminoacyl-tRNA-biosyntese er et nøkkelhastighetsbegrensende trinn i oversettelse. Aminosyremetabolisme spiller avgjørende roller i frukt-vin gjæring; produktene kan forvandles til karakteristiske aromaforbindelser som geraniol, noe som gjør det til en nøkkelrute for aromadannelse [36].

 

3 Konklusjoner

Bruker Hotan røde druer ogCistanche, ble den optimale prosessen for Cistanche Musalais definert som 32 grader Bx startsukker, 25 graders gjæringstemperatur og 7 % Cistanche-tilsetning, noe som ga alkohol (12,6 ± 0,6) % vol, total surhet (3,82 ± 0,19) g/l, totalt flavonoider (0,80 ± 0,01) ± 0,01 g (0,80 ± 0,0 s) ± 0,00) g/L. GC–MS identifiserte 38 aromaforbindelser (24 estere, 6 alkoholer, 2 ketoner, 2 aldehyder, andre). I forhold til tradisjonelle Musalais var nøkkelestere signifikant høyere med Cistanche, f.eks. etylacetat (6,42 % vs. 2.42%) og etylpalmitat (3,75 % vs. 1.18%), mens høyere alkoholer som isobutanol var lavere (2,11 % vs. 3.98%). Metabolomikk identifiserte 230 signifikant forskjellige metabolitter (VIP større enn eller lik 1, P < 0,05): 125 oppregulerte (f.eks. mogrolisomerer, crocin B) og 64 nedregulerte (f.eks. L(+)-ornitin, L(+)-citrullin). KEGG-anrikning indikerte primær clustering i ABC-transportører og aminosyrebiosynteseveier. Funksjonelle aktive stoffer inkludert trigonellin, krocin, flavonoider og polyfenoler ble betydelig beriket i Cistanche Musalais, noe som tyder på potensielle helsemessige fordeler; aminosyrebiosyntese spiller en viktig rolle i å forme karakteristisk smak. For dypere tilskrivning av nøkkelluktstoffer, bør fremtidig arbeid inkludere gasskromatografi-olfaktometri (GC-O) for å bestemme luktaktivitet/bidrag (f.eks. FD-faktorer) av rikelig med flyktige stoffer, og målrettet kvantitativ MS (f.eks. MRM) for absolutt kvantifisering av trigonellin, krocin, etc., vurdere helseverdien.

Opprinnelse av eksterne spektral-/metabolittressurser brukt for metabolittidentifikasjon (i henhold til databasene sitert i metode 1.3.8.3):

Human Metabolome Database (HMDB 5.0): https://hmdb.ca/ - en omfattende, fritt tilgjengelig database med 220 945 metabolittoppføringer inkludert kjemiske, kliniske og biokjemiske data; støtter tekst-, sekvens-, struktur-, MS- og NMR-søk; knyttet til KEGG, PubChem, MetaCyc, ChEBI, PDB, UniProt og GenBank. Tilknyttede databaser: DrugBank, T3DB, SMPDB, FooDB.

LIPIDMAPS: https://www.lipidmaps.org/ - en gratis lipidomikressurs med åpen tilgang. LMSD overstiger nå 50 000 kuraterte lipidstrukturer med detaljert klassifisering, krysskoblinger og herkomst; gir MS-analyse, strukturtegning, spektraldatabaser, veier og nomenklatur-/klassifiseringsverktøy.

mzCloud – Advanced Mass Spectral Database: https://www.mzcloud.org/ – støtter spektrum, struktur, understruktur, tre og m/z-søk. Nåværende skala: 32 330 forbindelser, 51 002 trær og 16 531 567 spektre (+ økninger i 2024). Optimalisert for Firefox/Chrome desktop nettlesere. Copyright © 2013–2025 HighChem LLC.

 

Referanser

[18] Fan GS, Wu QH, Liu PX, et al. Forskningsfremgang på rollen til lipase i syntesen av estere i Baijiu. Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology. 2021;21(1):351–360.
[19] Xue J, Wang YA, Jia XH, et al. Klassifisering og forskningsfremgang på fenyletanoidglykosider. Journal of Pharmaceutical Research. 2018;37(5):282–290.
[20] Liu CY, Zhao XQ, Kong LR, et al. Effekt av morbærbrandy på flyktige smakskomponenter og kvaliteten på lufttørkede pølser. Matvitenskap. 2023;44(6):244–253.
[21] Ren YT, Qiao ML, Sun ZY, et al. Dannelsesloven for høyere alkoholer under gjæringen av Baijiu med lett smak. Food and Fermentation Industries. 2023;49(4):38–44.
[22] Cao WY, Shu N, Yang YM, et al. Omfattende evaluering av ni druesorter basert på grunnleggende fysiske og kjemiske indikatorer, farge og flyktige forbindelser. Forskningsrapport. 2023;13(2):121–144.
[23] Zhou R, Yuan Q, Jin XY, et al. Analyse av aromakomponenter av sterk saus-smak lagret Baijiu. Kinabrygging. 2020;39(7):137–143.
[24] Luo Y, Kong LH, Xue RQ, et al. Bitterhet i alkoholholdige drikker: profiler av persepsjon, bestanddeler og bidragsytere. Trender innen matvitenskap og teknologi. 2020;96:222–232.
[25] Huang YH, Kao TH, Chen BH. Utvikling av en GC–MS/MS-metode kombinert med HS–SPME–pil for å studere dannelse av furan og 10 derivater i modellsystemer og kommersielle matvarer. Food Chemistry. 2022;395:133572.
[26] Robles A, Fabjanowicz M, Chmiel T, et al. Bestemmelse og identifikasjon av organiske syrer i vinprøver: problemer og utfordringer. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 2019;120:115630.
[27] Shao SX, Xu MT, Lin YP, et al. Differensiell analyse av aromakomponenter av Huangguanyin oolong-te fra forskjellige geografiske opphav ved bruk av elektronisk nese og HS–SPME–GC–MS. Matvitenskap. 2023;44(4):232–239.
[28] Ni RJ, Zhan P, Tian HL. Effekter av steketid på flyktige smaksforbindelser i stekt pepperolje som analysert av GC – IMS og multivariat statistikk. Matvitenskap. 2022;43(6):279–286.
[29] Jin WG, Liu JX, Sun HY, et al. Karakterisering av flyktige organiske forbindelser av gigantisk salamanderolje forfalsket med peanøttolje av GC–IMS og kjemometri. Matvitenskap. 2023;44(10):368–376.
[30] Zhang Y, Tong XY, Chen BJ, et al. HS–GC–IMS for fingeravtrykk og smaksvariasjoner i Citrus reticulata pericarp under lagring med forskjellig Aspergillus niger-gjæring. Matkjemi. 2023;18:100653.
[31] Lu YA, Liu SJ, Lin LM, et al. Differensielle metabolitter av Prunella vulgaris pigger i forskjellige stadier basert på UPLC – MS/MS. China Journal of Chinese Materia Medica. 2024;49(10):2734–2744.
[32] Chen L, Jiang XQ, Yuan T, et al. Effekt og mekanismer av kinesisk medisin og dens aktive ingredienser for å forbedre antibakterielle aktiviteter av antibiotika: En gjennomgang. Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae. 2025;31(11):305–313.
[33] Yang SQ, Liu W, Song MR, et al. Effekter av trigonelline på invasjon og migrasjon av nyrecellekarsinomceller via NF-κB/MMP-9-signalering. Chinese Journal of Geriatrics. 2024;44(8):1998–2004.