Ekstraksjon, fysisk-kjemiske egenskaper, antialdrings- og antioksidantaktiviteter av polysakkarider fra industrielle hamprester Del 2

2.8. Aktivitetsstudie mot aldring

2.8.1. Cellelevedyktighet

In vitro blir cytotoksisitetseksperimenter ofte brukt for å vurdere toksisiteten til testede prøver [37]. Effektene av IHRPer på cellelevedyktigheten til HDF og HEK, som var de vanlig brukte epidermale cellelinjene, er vist i figur 5. IHRPer hadde nesten ingen cytotoksisitet for HDF og HEK. Videre kan IHRP-er fremme celleproliferasjon mellom 100 og 800 µg/mL. For å sikre at cellelevedyktigheten ikke ble påvirket av konsentrasjonen av prøven, valgte vi IHRP-konsentrasjoner under 400 µg/ml for følgende eksperimenter.

Glykosid av cistanche kan også øke aktiviteten til SOD i hjerte- og levervev, og redusere innholdet av lipofuscin og MDA i hvert vev betydelig, effektivt rense ulike reaktive oksygenradikaler (OH-, H₂O₂, etc.) og beskytte mot DNA-skader forårsaket av OH-radikaler. Cistanche-fenyletanoidglykosider har en sterk renseevne for frie radikaler, en høyere reduserende evne enn vitamin C, forbedrer aktiviteten til SOD i sædsuspensjon, reduserer innholdet av MDA og har en viss beskyttende effekt på sædmembranfunksjonen. Cistanche-polysakkarider kan øke aktiviteten til SOD og GSH-Px i erytrocytter og lungevev hos eksperimentelt senescent mus forårsaket av D-galaktose, samt redusere innholdet av MDA og kollagen i lunge og plasma, og øke innholdet av elastin, har en god rensende effekt på DPPH, forlenger hypoksitiden hos eldre mus, forbedrer aktiviteten til SOD i serum og forsinker den fysiologiske degenerasjonen av lunge hos eksperimentelt eldre mus. Med cellulær morfologisk degenerasjon har eksperimenter vist at Cistanche har den gode antioksidantevnen og har potensial til å være et medikament for å forebygge og behandle aldringssykdommer. Samtidig har echinacoside i Cistanche en betydelig evne til å rense DPPH-frie radikaler og kan rense reaktive oksygenarter, forhindre frie radikal-indusert kollagennedbrytning, og har også en god reparasjonseffekt på anionskader av tymin frie radikaler.

Klikk på Cistanches Herba For Antioxidants

【For mer informasjon:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

2.8.2. Skrapeanalyse av HDF-celler

Scratch-analysen er en in vitro-metode som er mye brukt for å evaluere bidraget fra cellulære og molekylære mekanismer til celleproliferasjon og migrasjon [38]. Bildene av den helbredende tilstanden til HDF-riper er vist i figur 6. IHRP-er av forskjellige konsentrasjoner var alle fordelaktige for helbredelsen av celleriper sammenlignet med kontrollen. Dessuten, når konsentrasjonen av IHRP-er var mellom 50 og 200 µg/ml, kunne IHRP-er betydelig fremme helingen av celleriper. Helingshastigheten for HDF-riper etter 24 timer var henholdsvis 64,51 ± 3,69 prosent (p < 0.01), 58,03 ± 3,90 prosent (p < 0,05) og 66,21 ± 6,60 prosent (p < 0,01) når IHRP-ene konsentrasjonen var 50, 100 og 200 µg/ml, som vist i tabell 6. Dessuten var den helbredende effekten av IHRP svært nær den til den positive kontrollen TGF- (62,29 ± 4,69 prosent, p < 0,01). Resultatene av scratch-analysen indikerte at IHRP-er kunne akselerere helingen av celleriper og fremme celleproliferasjon.

2.8.3. qRT-PCR-analyse av HDF-genekspresjon

Flere studier har blitt utført for å evaluere antialdringspotensialet til forskjellige planter [39,40]. Den relative kvantifiseringen av antialdringsgener av HDF er vist i figur 7. Som vist i figuren ble TGF-, Vc og HA brukt som den positive kontrollen. Rekkefølgen på AQP-3 relativ kvantifisering var HA > TGF- > IHRPs > Vc. Rekkefølgen på COL1A1 relativ kvantifisering var TGF-> Vc> HA> IHRPs. Rekkefølgen på COL3A1 relativ kvantifisering var Vc > TGF- > HA > IHRPs. Rekkefølgen for relativ kvantifisering av ELASTIN var TGF- > Vc > HA > IHRPs. Rekkefølgen på MMP-1 relativ kvantifisering var IHRP > HA > Vc > TGF-. Derfor, sammenlignet med den positive kontrollen, hadde IHRP-er nesten ingen positiv effekt på uttrykket av AQP-3, COL1A1, COL3A1 og ELASTIN. IHRP-er fremmet imidlertid uttrykket av MMP-1 betydelig. MMP-1 genereres primært av keratinocytter og brukes hovedsakelig til nedbryting og fragmentering av hudkollagenfibre [41]. Oppsummert kan IHRP-er fremme HDF-spredning og uttrykk for antialdringsrelaterte gener, noe som indikerer antialdrings- og hudreparasjonspotensialet til IHRP.

3. Materialer og metoder

3.1. Materialer og reagenser

IHR ble levert av Yunnan Hempmon Pharmaceuticals Co., Ltd. (Kunming, Kina). Fenol, -naftol, svovelsyre, karbazol, Coomassie blue G-250, fosforsyre, etanol, kloroform og monosakkaridkontroll ble levert av Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. (Shanghai, Kina). Galakturonsyre, glukuronsyre, guluronsyre og arbutin ble kjøpt fra Sigma-Aldrich Co., Ltd. (St. Louis, MO, USA). Human dermal fibroblast (HDF), humane epidermale keratinocytter (HEK) og komplett cellemedium ble kjøpt fra Sciencell Co., Ltd. (Carlsbad, CA, USA). 12-brønnplater og 96-brønnplater ble tilbudt av Corning Co., Ltd. (Corning, NY, USA). CCK-8 cellelevedyktighetsanalysesett ble kjøpt fra DOJINDO Biology Co., Ltd. (Tokyo, Japan), og andre deteksjonssett ble tilbudt av Takara Co., Ltd. (Takara, Japan).

3.2. Optimalisering av IHRP-utvinning

3.2.1. Sammenligning av forskjellige utvinningsmetoder

Perkolasjonsekstraksjon: 100 g IHR ble tilsatt 2000 ml avionisert vann. Ekstraksjonen ble utført med en strømningshastighet på 150 ± 50 ml/t etter 2 timer. Oppvarmingsekstraksjon: 100 g IHR ble tilsatt i 2000 ml avionisert vann. Ekstraksjonen ble utført ved 98 ◦C i 1 time og prosessen ble gjentatt to ganger. Ultralydassistert ekstraksjon: 100 g IHR ble oppløst i 2000 ml avionisert vann. Ekstraksjonen ble utført i 0,5 time ved 60 ◦C og prosessen ble gjentatt to ganger.

Filtratene ble konsentrert ved bruk av en vakuum rotasjonsfordamper. Deretter ble løsningen tørket med en vakuumtørker. Polysakkaridinnholdet ble bestemt for å velge en passende metode.

3.2.2. Enkeltfaktoreksperimenter

For utvinning av IHRP ble 100 g IHR tilsatt en viss mengde avionisert vann. Ekstraksjonstemperatur (40, 60, 80 og 98 ± 2 ◦C), forhold mellom faststoff og væske (1:6, 1:8, 1:10 og 1:15), ekstraksjonstid (0,5, 1,0, 1,5 og 2 timer), pH (3, 5, 7, 9 og 11), og flere suksessive ekstraksjoner (1, 2, 3, 4) ble studert separat for å evaluere påvirkningen av individuelle faktorer på IHRP-ekstraksjon.

3.2.3. Ortogonal eksperimentell design

Ekstraksjonsforholdene ble ytterligere optimalisert ved ortogonal eksperimentell design. Som vist i tabell 7 var de fire valgte variablene ekstraksjonstemperatur (60, 80 og 98 ± 2 ◦C), RS/L (1:6, 1:8 og 1:10), antall suksessive ekstraksjoner (1) , 2 og 3), og pH (4, 7 og 10). De ortogonale forsøkene ble delt inn i 9 grupper. Vekten av polysakkarider ble ansett som målet for å estimere ekstraksjonsforholdene.

3.3. Skjerm av IHRPs alkoholnedbørsforhold

Ekstraksjonsløsningen ble oppnådd ved de optimale betingelsene i henhold til 3.2 og 400 ml etanol ble tilsatt. Eksperimentene ble utført basert på de forskjellige hastighetene for tilsetning av alkohol, omrøringsmetode og avkjølingshastighet i tabell 8. Bunnfallet ble oppnådd etter sentrifugering og tørking. Deretter ble vekten og polysakkaridinnholdet tatt opp for å bestemme de passende alkoholutfellingsforholdene.

3.4. Bestemmelse av polysakkaridutbytte og kjemisk sammensetning av IHRP

Proteininnholdet ble beregnet basert på Bradford-metoden og bovint serumalbumin (BSA) ble brukt som standard [42]. Det totale sukkerinnholdet i IHRP ble oppnådd i henhold til fenolsulfatmetoden og glukosen ble brukt som standard [43]. Uronsyreinnholdet ble oppnådd ved en karbazol-svovelsyremetode [44]. Polysakkaridutbytte ble oppnådd ved ligning (1).

hvor YP refererer til polysakkarid-utbyttet, mA refererer til vekten av IHRP-er, og mB representerer vekten av IHR brukt for polysakkaridekstraksjon.

3.5. Rensing av IHRP

Først ble 100 g rå IHRP fremstilt ved den optimale tilstanden bestemt i seksjoner 3.2 og 3.3. De rå IHRPene ble ytterligere renset ved forskjellige metoder.

Aktivert karbonadsorpsjon: 10 g rå IHRP ble tilsatt i 200 ml avionisert vann. Det aktiverte karbonet på henholdsvis 1 prosent, 2 prosent, 4 prosent og 8 prosent IHRPs vekt ble blandet med løsningen. Deretter ble løsningen omrørt ved 60 ◦C i 1 time og filtrert. Etter vasking med avionisert vann ble filtratet konsentrert og tørket.

Membranfiltrering: 10 g rå IHRP ble tilsatt i 500 ml avionisert vann. Deretter ble løsningen filtrert av membraner med forskjellige molekylvekter (30,000 Da, 10,000 Da, 1000 Da og 500 Da) kontinuerlig. Filtratet og retentatet ble både samlet og tørket. Til slutt ble IHRPer med forskjellige molekylvekter oppnådd.

Savage-metode: 1 g rå IHRP ble tilsatt i 100 ml avionisert vann. Deretter ble løsningen blandet med Sevage-reagens (n-butanol: kloroform=1: 5 (v/v)). Blandingen ble omrørt i 15 minutter og overført til skilletrakten for stratifisering. Prosessen ovenfor ble gjentatt 5 ganger. Deretter ble den organiske fasen og den vandige fasen tørket.

Kolonnekromatografi: 10 g svakt basisk anionbytterharpiks ble nedsenket i avionisert vann i 2 timer, og deretter lastet inn i en glasskolonne (2 × 30 cm). 10 g rå IHRP ble tilsatt i 200 ml avionisert vann. Deretter ble løsningen sakte ført gjennom harpikslaget. Kolonnen ble skylt med 100 ml 30% etanol. Elueringsmidlet ble konsentrert og tørket.

3.6. Monosakkaridsammensetningsanalyse

Monosakkaridsammensetningstesten ble utført i henhold til forrige metode med små modifikasjoner [45]; 5 mg IHRP ble hydrolysert med 1 ml trifluoreddiksyre (TFA, 2 M) i 6 timer ved 105 ◦C. Deretter ble løsningen tørket under en nitrogenatmosfære. Det tørkede hydrolysatet ble tilsatt til 5 ml avionisert vann etter at TFA ble fjernet med metanol. Etterpå, 0,5 mL 0.3 M NaOH-løsning og 1 mL 0.5 M 1-fenyl-3-metyl-5- pyrazolon (PMP) metanolløsning ble tilsatt til hydrolysatet. Den oppnådde løsningen ble holdt i et vannbad i 2 timer ved 70 ◦C for derivatisering. Deretter ble 0,5 mL HCl-løsning (0,3 M) tilsatt for nøytralisering. Løsningen ble blandet med 1 ml kloroform for HPLC-analyse. Flere monosakkarider ble brukt som referanser. Kromatografiske forhold: Mobil fase A (82 prosent): 0,1 M KH2PO4-løsning. Mobil fase B (18 prosent): acetonitril. Kolonne: C18 (5 µm, 4,6 x 250 mm). Injeksjonsvolum: 10 µL. Strømningshastighet: 1,0 ml/min. Deteksjonsbølgelengde: 245 nm. Kolonnetemperatur: 30 ◦C.

3.7. Fourier Transform Infrarød Spectroscopy (FT-IR)

Prøvene for FT-IR-analyse ble fremstilt ved å blande 5 mg IHRP med 125 mg KBr. FT-IR-spektra av prøver ble oppnådd mellom 4000 og 500 cm−1.

3.8. Antioksidantaktivitetsstudie

3.8.1. DPPH Radical Scavenging Activity

DPPH-frie radikaler-fjernende aktiviteten til IHRPer ble evaluert basert på en rapportert metode med noen få modifikasjoner [46]. Kort sagt, 2 mL prøveløsning (0.2, 0.4, 0.6, 0.8 og 1.0 mg/ mL) ble blandet med 2 mL DPPH-løsning (0,1 mM). Blandingen ble holdt i 30 minutter i mørket, og deretter ble absorbansen (Abs) oppnådd ved 517 nm. DPPH-rensingshastigheten ble estimert med følgende ligning (ligning (2)), og den 50 prosent effektive konsentrasjonen (EC50) ble talt.

der RSD representerer frie radikalers fjerningshastighet, Ai refererer til Abs av reaksjonssystemet (DPPH med prøven), Aj er Abs av prøvebakgrunnen (løsningsmiddel med prøven), og A0 er Abs av den negative kontrollen (DPPH med løsemiddel).

3.8.2. ABTS Radical Scavenging Activity

ABTS-renseaktiviteten til IHRPer ble evaluert basert på en tidligere metode [47]. Kort fortalt ble kaliumpersulfatløsningen (2,45 mM) blandet med ABTS-løsningen (7 mM) i mørket i 12 timer. Den oppnådde ABTS-løsningen ble fortynnet 50 ganger til abs på 0.70 ± 0.02 ved 734 nm. Deretter ble 1 mL prøveløsning (0.2, 0.4, 0.6, 0.8 og 1.0 mg/ml) tilsatt til 4 mL ABTS-løsning. Blandingen ble ristet raskt i 1 min og plassert i mørke i 6 min. Deretter ble Abs målt ved 734 nm og Vc ble brukt som en positiv kontroll. ABTS-rensehastigheten ble beregnet med ligning (2).

3.9. Aktivitetsstudie mot aldring

3.9.1. Cellekultur

Human dermal fibroblast (HDF) og human epidermal keratinocytter (HEK) ble kjøpt fra ScienCell Co., Ltd. Cellene ble dyrket med DMEM-medium inneholdende 10 prosent FBS. Kulturbetingelsen var 37 ◦C med 5 prosent CO2.

3.9.2. Cellelevedyktighet

Cell Counting Kit-8 (CCK-8)-analyse ble utført for å bestemme cytotoksisiteten til IHRP-er mot HDF- og HEK-celler. Cellene ble dyrket i 96-brønnplater med en konsentrasjon på 2 × 104 celler/brønn i 48 timer. Etterpå ble 100 µL friskt medium inneholdende prøver tilsatt og brønnene ble inkubert i 24 timer. Deretter ble CCK-8-løsning tilsatt til brønnene i henhold til instruksjonene til testsett, og platen ble inkubert i 2 timer. Abs ved 450 nm ble oppnådd for å beregne cellelevedyktigheten.

3.9.3. Scratch Assay

HDF ble dyrket ved 37 ◦C med 5 prosent CO2. Deretter ble cellene sådd inn i en 12-brønnplate i en konsentrasjon på 1 × 105 celler/brønn. Etter inkubering i 48 timer ble ripen laget på HDF-cellelaget av sprøytenålen. Cellefragmentene ble renset med PBS og prøvene med forskjellige konsentrasjoner ble tilsatt. Deretter ble helbredelsen av cellelagsriper observert etter 24 timer for å evaluere effekten av IHRP på spredningen av HDF. De oppnådde bildene ble kvantifisert med Image J-programvare [48]. Transformerende vekstfaktor- (TGF-) ble brukt som positiv kontroll. Tilhelingshastigheten ble beregnet i henhold til ligning (3).

hvor A1 representerer det innledende ripeområdet og A2 refererer til det endelige skrapeområdet.

3.9.4. Kvantitativ RT-PCR (qRT-PCR) analyse

Deretter ble cellene sådd i 12-brønnplater med en konsentrasjon på 1 × 105 celler/brønn. Etter inkubasjon i 48 timer ble prøvene blandet og dyrket i ytterligere 24 timer. Totalt RNA ble ekstrahert og cDNA ble syntetisert. qRT-PCR-analysene for aquaporingenet (AQP-3), kollagengenet (COL1A1 og COL3A1), elastingenet (ELASTIN) og matrisemetalloproteinase (MMP-1) ble utført ved bruk av sanntids PCR-system (Applied Biosystems Life Technologies, Inc., ABI StepOnePlus). Relativ kvantifisering ble utført med den komparative CT-metoden (2-∆∆Ct-metoden). Hyaluronsyre (HA), Vc og TGF- ble brukt som positiv kontroll.

3.10. Statistisk analyse

Resultatene ble vist som gjennomsnitt ± SD (n {{0}}). Statistisk signifikans ble utført av ANOVA. Verdier på p < 0,05 ble ansett for å være statistisk signifikante.

4. Konklusjoner

I dette arbeidet ble polysakkaridekstraksjonen fra IHR optimalisert ved enkeltfaktoreksperimenter og ortogonal eksperimentell design. De optimale oppvarmingsekstraksjonsforholdene var ekstraksjonstemperaturen var 98 ◦C, faststoff-væske-forhold på 1:10, ekstraksjonstid på 1 time, antall påfølgende ekstraksjoner på 2 og pH på 4. Ekstraksjonsforholdet og polysakkaridinnholdet var henholdsvis 2{{40}},12 prosent og 12,35 prosent under forholdene. I tillegg var de passende alkoholutfellingsforholdene pumping med 2 L/t, kontinuerlig omrøring og isvannbad i 4 timer. De urene IHRP-ene ble ytterligere renset ved kolonnekromatografi og polysakkarid/proteininnholdet i rensede IHRP-er var 34,44 prosent og 1,61 prosent. Monosakkaridsammensetningen til IHRP-er var: fukose (1,33 prosent), arabinose (19,60 prosent), rhamnose (10,41 prosent), galaktose (20,87 prosent), glukose (27,42 prosent), xylose (4,23 prosent), ribose (3,12 prosent), galakturonsyre (3,12 prosent). syre (6,22 prosent), guluronsyre (0,28 prosent) og glukuronsyre (2,37 prosent). FT-IR demonstrerte polysakkaridskjelettet til IHRPs. Dessuten var EC50-verdiene til ABTS- og DPPH-radikaler 0,34 og 0,47 mg/ml, noe som viser den store antioksidantaktiviteten til IHRP. IHRP kan også fremme celleproliferasjon av HDF og HEK og helbredelse av celleriper. Dessuten kan IHRP-er betydelig fremme uttrykket av MMP-1. Derfor antas det at polysakkaridene fra industrielle hamprester kan utvikles som potensielle antioksidant- og antialdringsprodukter for kosmetikk eller funksjonell mat.

Forfatterbidrag:TC, QZ og BZ designet eksperimentene. TC og HL (Hang Li) utførte eksperimentene og skrev det første utkastet. TC, HL (Hang Li), HL (Hongning Lv), XL og ML analyserte dataene. MT, SH, QZ og BZ reviderte manuskriptet. Alle forfattere har lest og godtatt den publiserte versjonen av manuskriptet.

Finansiering: Denne forskningen ble finansiert av Yunnan Hempmon Pharmaceuticals Co., Ltd.

Uttalelse fra institusjonell revisjonskomité:Ikke aktuelt.

Erklæring om informert samtykke:Ikke aktuelt.

Datatilgjengelighetserklæring:Ikke aktuelt.

Interessekonflikter:Forfatterne har erklært ingen interessekonflikter.

Eksempeltilgjengelighet:Prøver av forbindelsene IHR og IHRP er tilgjengelig fra forfatterne.

Referanser

1. Kumar, P.; Mahato, DK; Kamle, M.; Borah, R.; Sharma, B.; Pandhi, S.; Tripathi, V.; Yadav, HS; Devi, S.; Patil, U. Farmakologiske egenskaper, terapeutisk potensial og juridisk status til Cannabis sativa L.: En oversikt. Phytother. Res. 2021, 35, 6010–6029. [CrossRef] [PubMed]

2. Shoyama, Y.; Yagi, M.; Nishioka, I.; Yamauchi, T. Biosyntese av cannabinoidsyrer. Fytokjemi 1975, 14, 2189–2192. [CrossRef]

3. De Meijer, ED; Van der Kamp, H.; Van Eeuwijk, F. Karakterisering av Cannabis-tiltredelser om cannabinoidinnhold om andre plantekarakterer. Euphytica 1992, 62, 187–200. [CrossRef]

4. Luca, SV; Roehrer, S.; Kleigrewe, K.; Minceva, M. Tilnærming for samtidig cannabidiol-isolering og plantevernmiddelfjerning fra hampeekstrakter med væske-væskekromatografi. Ind. avling. Prod. 2020, 155, 112726. [CrossRef]

5. Bonini, SA; Premoli, M.; Tambaro, S.; Kumar, A.; Maccarinelli, G.; Memo, M.; Mastinu, A. Cannabis sativa: En omfattende etnofarmakologisk gjennomgang av en medisinsk plante med en lang historie. J. Ethnopharmacol. 2018, 227, 300–315. [CrossRef] [PubMed]

6. Hartsel, JA; Eades, J.; Hickory, B.; Makriyannis, A. Cannabis sativa og hamp. I Nutraceuticals; Gupta, RC, red.; Academic Press: Boston, MA, USA, 2016; Kapittel 53; s. 735–754.

7. Palmieri, S.; Mascini, M.; Oliva, E.; Viteritti, E.; Eugelio, F.; Fanti, F.; Compagnone, D.; Sergi, M. Cannabinoid Profile in Cannabis sativa L. Samples by Means of LC-MRM/IDA/EPI Analysis: A New Approach for Cultivar Classification. J. Agric. Food Chem. 2022, 70, 3907–3916. [CrossRef]

8. Atalay, S.; Jarocka-Karpowicz, I.; Skrzydlewska, E. Cannabidiols antioksidative og antiinflammatoriske egenskaper. Antioksidanter 2020, 9, 21. [CrossRef]

9. Small, E. Evolusjon og klassifisering av Cannabis sativa (marihuana, hamp) om menneskelig bruk. Bot. Rev. 2015, 81, 189–294. [CrossRef]

10. Mazzara, E.; Carletti, R.; Petrelli, R.; Mustafa, AM; Caprioli, G.; Fiorini, D.; Scortichini, S.; Dall'Acqua, S.; Sut, S.; Nunez, S.; et al. Grønn utvinning av hamp (Cannabis sativa L.) ved hjelp av mikrobølgemetode for utvinning av tre verdifulle fraksjoner (essensiell olje, fenolforbindelser og cannabinoider): En sentral komposittdesignoptimaliseringsstudie. J. Sci. Food Agric. 2022, i trykken. [CrossRef]

11. Tan, MH; Chang, SL; Liu, JN; Li, H.; Xu, PW; Wang, PD; Wang, XD; Zhao, MX; Zhao, B.; Wang, LW; et al. Fysisk-kjemiske egenskaper, antioksidanter og antidiabetiske aktiviteter av polysakkarider fra frø fra Quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). Molecules 2020, 25, 3840. [CrossRef]

12. Zhai, FG; Liang, QC; Wu, YY; Liu, JQ; Liu, JW Rødt ginseng-polysakkarid viser antikreftaktivitet gjennom GPX4-nedregulering-indusert ferroptose. Pharm. Biol. 2022, 60, 909–914. [CrossRef]

13. Zhou, X.; Afzal, S.; Wohlmuth, H.; Munch, G.; Leach, D.; Lav, M.; Li, CG Synergistisk antiinflammatorisk aktivitet av ingefær- og gurkemeieekstrakter for å hemme lipopolysakkarid og interferon-gamma-induserte proinflammatoriske mediatorer. Molecules 2022, 27, 3877. [CrossRef] [PubMed]

14. Zou, YF; Li, CY; Fu, YP; Jiang, QX; Peng, X.; Li, LX; Song, X.; Zhao, XH; Li, YP; Chen, XF; et al. Sammenligningen av foreløpig struktur og intestinal antiinflammatorisk og antioksidativ aktivitet av polysakkarider fra forskjellige rotdeler av Angelica sinensis (Oliv.) Diels. J. Ethnopharmacol. 2022, 295, 115446. [CrossRef] [PubMed]

15. Huang, Z.; Zong, MH; Lou, WY Forberedelse, strukturell belysning og immunmodulerende aktivitet av et polysakkarid fra Millettia speciosa Champ. Ind. avling. Prod. 2022, 182, 114889. [CrossRef]

16. Cao, WY; Wang, CX; Mayhesumu, X.; Pan, L.; Dang, Y.; Yili, A.; Abuduwaili, A.; Mansur, S. Isolation, Structural Elucidation, Antioxidant and Hypoglycemic Activity of Polysaccharides of Brassica rapa L. Molecules 2022, 27, 3002. [CrossRef] [PubMed]

17. Panggabean, JA; Adiguna, SP; Rahmawati, SI; Ahmadi, P.; Zainuddin, EN; Bayu, A.; Putra, MY Antivirale aktiviteter av algebaserte sulfaterte polysakkarider. Molecules 2022, 27, 1178. [CrossRef]

18. Baeva, E.; Blaha, R.; Lavrova, E.; Sushytskyi, L.; Copikova, J.; Jablonsky, I.; Kloucek, P.; Synytsya, A. Polysaccharides from Basidiocarps of Cultivating Mushroom Pleurotus ostreatus: Isolation and Structural Characterization. Molecules 2019, 24, 2740. [CrossRef]

19. Xu, JQ; Zhang, JL; Sang, YM; Wei, YN; Chen, XY; Wang, YX; Xue, HK Polysakkarider fra medisin- og mathomologimaterialer: En gjennomgang av deres ekstraksjon, rensing, struktur og biologiske aktiviteter. Molecules 2022, 27, 3215. [CrossRef]

20. Haustveit, G.; Wold, JK Noen karbohydrater med lav molekylvekt tilstede i Cannabis sativa L. Carbohydr. Res. 1973, 29, 325–329. [CrossRef]

21. Hillestad, A.; Wold, JK; Paulsen, BS Strukturelle studier av vannløselige glykoproteiner fra Cannabis sativa L. Carbohydr. Res. 1977, 57, 135–144. [CrossRef]

22. Groce, JW; Jones, LA Karbohydrat- og syklitolinnhold i Cannabis. J. Agric. Food Chem. 1973, 21, 211–214. [PubMed]

23. Wen, Z.-S.; Xue, R.; Du, M.; Tang, Z.; Xiang, X.-W.; Zheng, B.; Qu, Y.-L. Hampfrøpolysakkarider beskytter tarmepitelceller fra hydrogenperoksid-indusert oksidativt stress. Int. J. Biol. Macromol. 2019, 135, 203–211. [PubMed]

24. Bao-yao, BY-gW; Jie, TJ-wL Ekstraksjonsisolering og rensing av vannløselige polysakkarider fra hampfrø. Food Sci. Teknol. 2004, 6, 157–161.

25. Guo, L.; Kong, N.; Zhang, X.; Ma, H. Multimode ultralydekstraksjon av polysakkarider fra maca (Lepidium meyenii): Optimalisering, rensing og in vitro immunregulerende aktivitet. Ultrason. Sonochem. 2022, 88, 106062. [CrossRef]

26. Chi, YZ; Li, YP; Zhang, GL; Gao, YQ; Ja, H.; Gao, J.; Wang, P. Effekt av ekstraksjonsteknikker på egenskapene til polysakkarider fra Enteromorpha prolifera og deres anvendelighet i jernkelering. Karbohydr. Polym. 2018, 181, 616–623. [CrossRef] [PubMed]

27. Shi, MJ; Wei, X.; Xu, J.; Chen, BJ; Zhao, DY; Cui, S.; Zhou, T. Karboksymetylerte degraderte polysakkarider fra Enteromorpha prolifera: Preparat og in vitro antioksidantaktivitet. Food Chem. 2017, 215, 76–83.

28. Ren, CJ; Zhang, Y.; Cui, WZ; Lu, GB; Wang, YW; Gao, HJ; Huang, L.; Mu, ZM Et polysakkaridekstrakt av morbærblad forbedrer hepatisk glukosemetabolisme og insulinsignalering hos rotter med type 2 diabetes indusert av høyfettdiett og streptozotocin. Int. J. Biol. Macromol. 2015, 72, 951–959.

29. Wu, JW; Li, P.; Tao, DB; Zhao, HT; Sun, RY; Ma, FM; Zhang, BQ Effekt av løsningsplasmaprosess med hydrogenperoksid på nedbrytningen og antioksidantaktiviteten til polysakkarid fra Auricularia auricula. Int. J. Biol. Macromol. 2018, 117, 1299–1304.

30. Fan, SH; Li, JN; Bai, BQ Rensing, strukturell belysning og in vivo immunitetsforbedrende aktivitet av polysakkarider fra quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) frø. Biosci. Bioteknologi. Biochem. 2019, 83, 2334–2344.

31. Sun, YJ; Hou, ST; Song, S.; Zhang, B.; Ai, CQ; Chen, XF; Liu, N. Effekten av sur, vann og alkalisk ekstraksjon på strukturelle egenskaper, antioksidantaktivitetene til Laminaria japonica polysaccharides. Int. J. Biol. Macromol. 2018, 112, 985–995.

32. Patel, MK; Tanna, B.; Mishra, A.; Jha, B. Fysisk-kjemisk karakterisering, antioksidant- og anti-proliferative aktiviteter av et polysakkarid ekstrahert fra psylliumblader (P. ovata). Int. J. Biol. Macromol. 2018, 118, 976–987. [PubMed]

33. Palmieri, S.; Fanti, F.; Oliva, E.; Viteritti, E.; Sergi, M.; Pepe, A.; Compagnone, D. Kjemisk karakterisering og evaluering av antioksidantaktivitet fra forskjellige kultivarer av Cannabis sativa L. i Abruzzos region. Nat. Prod. Res. 2022, 1–5. [CrossRef] [PubMed]

34. Li, H.; Zhao, Q.-S.; Chang, S.-L.; Chang, T.-R.; Tan, M.-H.; Zhao, B. Utvikling av cannabidiol fullspektret olje/2,6-di-ometyl- -cyklodekstrin inklusjonskompleks med forbedret vannløselighet, bioaktivitet og termisk stabilitet. J. Mol. Liq. 2022, 347, 118318.

35. Chen, L.; Yang, W.; Gao, C.; Liao, X.; Yang, J.; Yang, B. Kompleksene av cannabidiol mediert av brokoblede cyklodekstrindimerer med høy solubilisering, in vitro antioksidantaktivitet og cytotoksisitet. J. Mol. Liq. 2022, 345, 117017.

36. Russo, C.; Lavorgna, M.; Nugnes, R.; Orlo, E.; Isidori, M. Sammenlignende vurdering av antimikrobielle, antiradikale og cytotoksiske aktiviteter av cannabidiol og dets propylanalog cannabidivarin. Sci. Rep. 2021, 11, 22494.

37. Khatun, B.; Baishya, P.; Ramteke, A.; Maji, TK Studie av kompleksdannelsen av strukturelt modifisert curcumin med hydroksypropyl beta-cyklodekstrin og dets effekt på antikreftaktivitet. New J. Chem. 2020, 44, 4887–4897.

38. Bobadilla, AVP; Arevalo, J.; Sarro, E.; Byrne, HM; Maini, PK; Carraro, T.; Balocco, S.; Meseguer, A.; Alarcon, T. In vitro cellemigrasjonskvantifiseringsmetode for scratch-analyser. JR Soc. Grensesnitt 2019, 16, 20180709. [CrossRef]

39. Salem, MA; Radwan, RA; Mostafa, ES; Alseekh, S.; Fernie, AR; Ezzat, SM Ved å bruke en UPLC/MS-basert umålrettet metabolomikk-tilnærming for å vurdere antioksidantkapasiteten og antialdringspotensialet til utvalgte urter. RSC Adv. 2020, 10, 31511–31524.

40. Campa, M.; Baron, E. Anti-aldringseffekter av utvalgte botaniske stoffer: vitenskapelig bevis og aktuelle trender. Kosmetikk 2018, 5, 54.

41. Freitas-Rodriguez, S.; Folgueras, AR; Lopez-Otin, C. Rollen til matrisemetalloproteinaser i aldring: vevsremodellering og videre. Biochim. Biofys. Acta Mol. Cell Res. 2017, 1864, 2015–2025.

42. Bradford, MM Rask og sensitiv metode for kvantifisering av mikrogrammengder av protein ved bruk av prinsippet om proteinfargebinding. Anal. Biochem. 1976, 72, 248–254. [PubMed]

43. Dubois, M.; Gilles, KA; Hamilton, JK; Rebers, PA; Smith, F. Kolorimetrisk metode for bestemmelse av sukker og beslektede stoffer. Anal. Chem. 1956, 28, 350–356. [CrossRef]

44. Bitter, T.; Muir, HM En modifisert uronsyrekarbazolreaksjon. Anal. Biochem. 1962, 4, 330–334. [CrossRef]

45. Dai, J.; Wu, Y.; Chen, SW; Zhu, S.; Yin, HP; Wang, M.; Tang, JA Sukkersammensetningsbestemmelse av polysakkarider fra Dunaliella salina ved modifisert RP-HPLC-metode for pre-kolonnederivatisering med 1-fenyl-3-metyl-5-pyrazolon. Karbohydr. Polym. 2010, 82, 629–635.

46. ​​Gao, J.; Zhang, T.; Jin, ZY; Xu, XM; Wang, JH; Zha, XQ; Chen, HQ Strukturell karakterisering, fysisk-kjemiske egenskaper og antioksidantaktivitet av polysakkarid fra Lilium lancifolium Thunb. Food Chem. 2015, 169, 430–438.

47. Xiao, H.; Fu, X.; Cao, C.; Li, C.; Chen, C.; Huang, Q. Sulfated modifikasjon, karakterisering, antioksidant og hypoglykemiske aktiviteter av polysakkarider fra Sargassum pallidum. Int. J. Biol. Macromol. 2018, 121, 407–414.

48. Allaw, M.; Manconi, M.; Aroffu, M.; Marongiu, F.; Porceddu, M.; Bacchetta, G.; Usach, I.; Rached, RA; Rajha, HN; Maroun, RG; et al. Ekstraksjon, karakterisering og inkorporering av Hypericum Scruglii-ekstrakt i ad hoc-formulerte fosfolipidvesikler designet for behandling av hudsykdommer forbundet med oksidativt stress. Farmasi 2020, 12, 1010.

【For mer informasjon:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】