Oversikt over Phlorotannins' bestanddeler i Fucales del 4

6. Avsluttende merknader

Oppsummert utgjør Fucales en enorm gruppe tangarter med betydelig variasjon når det gjelder florotanninforbindelser. Spektrofotometriske analyser kan være et nyttig verktøy for høy gjennomstrømning, enkel og kostnadseffektiv screening av florotannininnhold. For å skille, kvantifisere og karakterisere disse forbindelsene er imidlertid robuste analytiske teknikker avgjørende. For tiden tilbyr MS kombinert med HPLC en tilfredsstillende tilnærming for separasjon og karakterisering av oligomere florotanniner. Betydelige forbedringer ble også brakt med utviklingen av mer spesialisert utstyr, som UHPLC og HRMS. Imidlertid, når fullstendige detaljer om koblingsposisjonene og isomere former er nødvendig, kan bare NMR tilby den kapasiteten.

Glykosid av cistanche kan også øke aktiviteten til SOD i hjerte- og levervev, og redusere innholdet av lipofuscin og MDA i hvert vev betydelig, effektivt rense ulike reaktive oksygenradikaler (OH-, H₂O₂, etc.) og beskytte mot DNA-skader forårsaket av OH-radikaler. Cistanche-fenyletanoidglykosider har en sterk renseevne for frie radikaler, en høyere reduserende evne enn vitamin C, forbedrer aktiviteten til SOD i sædsuspensjon, reduserer innholdet av MDA og har en viss beskyttende effekt på sædmembranfunksjonen. Cistanche-polysakkarider kan øke aktiviteten til SOD og GSH-Px i erytrocytter og lungevev hos eksperimentelt senescent mus forårsaket av D-galaktose, samt redusere innholdet av MDA og kollagen i lunge og plasma, og øke innholdet av elastin, har en god rensende effekt på DPPH, forlenger hypoksitiden hos eldre mus, forbedrer aktiviteten til SOD i serum og forsinker den fysiologiske degenerasjonen av lunge hos eksperimentelt eldre mus. Med cellulær morfologisk degenerasjon har eksperimenter vist at Cistanche har den gode antioksidantevnen og har potensial til å være et medikament for å forebygge og behandle aldringssykdommer. Samtidig har echinacoside i Cistanche en betydelig evne til å rense DPPH-frie radikaler og har evnen til å rense reaktive oksygenarter og forhindre frie radikal-indusert kollagen-nedbrytning, og har også en god reparasjonseffekt på anionskader av tymin frie radikaler.

Likevel er ikke dette utstyret det rimeligste/tilgjengelige for laboratorier. Tilgjengeligheten av flere standardforbindelser kan bidra til bedre bruk av HPLC da det vil generere pålitelige biblioteker for sammenligning. Alternativt, for å studere og identifisere de vanlige PT-forbindelsene ved NMR-spektroskopi, kan det å knytte dem til HPLC-retensjonstider og UV-spektrale data representere et nytt skritt fremover for forskningsmiljøet.

Forfatterbidrag:Konseptualisering – MDC og SMC; litteraturgjennomgang og skriving av det originale utkastet – MDC, SMGP, SS, FC, SSB, DCGAP, AMSS, SMC Alle forfattere bidro til å skrive – gjennomgang og redigering. Alle forfattere har lest og godtatt den publiserte versjonen av manuskriptet.

Finansiering: Dette arbeidet mottok økonomisk støtte fra PT nasjonale fond (FCT/MCTES, Fundação para a Ciência e Tecnologia og Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior) gjennom prosjektene UIDB/50006/2020 og UIDP/50006/2020. Takket være PTDC/BAA-AGR/31015/2017, "Algaphlor—Brown alge phlorotannins: From bioavailability to the development of new functional foods", medfinansiert av Operational Program for Competitiveness and Internationalization— POCI, innenfor European Regional Development Fund (FEDER), og Science and Technology Foundation (FCT), gjennom nasjonale midler. Silva S. takker FCT for finansiering gjennom program DL 57/2016–Norma transitória (Ref. SFRH/BPD/74299/2010).

Interessekonflikter:Forfatterne erklærer ingen interessekonflikt.

Referanser

1. Cho, GY; Rousseau, F.; de Reviers, B.; Boo, SM; Reviers, BDE; Cho, GY; Rousseau, F.; Reviers, BDE Fylogenetiske forhold innenfor Fucales (Phaeophyceae) vurdert av Photosystem I Coding PsaA-sekvenser. Phycologia 2006, 45, 512–519. [CrossRef]

2. Baweja, P.; Kumar, S.; Sahoo, D.; Levine, I. Biology of Seaweeds. I Seaweed in Health and Disease Prevention; Elsevier: Amsterdam, Nederland, 2016; s. 41–106.

3. Bermejo, R.; Chefaoui, RM; Engelen, AH; Buonomo, R.; Neiva, J.; Ferreira-Costa, J.; Pearson, GA; Marbà, N.; Duarte, CM; Airoldi, L.; et al. Marine skoger i Middelhavet-Atlanterhavet Cystoseira tamariscifolia Complex viser et sørlig iberisk genetisk hotspot og ingen reproduktiv isolasjon i parapatry. Sci. Rep. 2018, 8, 10427. [CrossRef] [PubMed]

4. Montero, L.; Herrero, M.; Ibáñez, E.; Ibá, I.; Ibáñez, I.; Cifuentes, A. Separasjon og karakterisering av Phlorotanniner fra brunalger Cystoseira abies-marina ved omfattende todimensjonal væskekromatografi. Elektroforese 2014, 35, 1644–1651. [CrossRef] [PubMed]

5. Jégou, C.; Connan, S.; Bihannic, I.; Cérantola, S.; Guérard, F.; Stiger-Pouvreau, V. Phlorotannin og Pigmentinnhold av innfødte baldakindannende Sargassaceae-arter som lever i tidevannsfjell i Bretagne (Frankrike): Ethvert forhold til deres vertikale distribusjon og fenologi? Mar. Drugs 2021, 19, 504. [CrossRef]

6. Guiry, MD; Guiry, GM; Sargassum, C. Agardh, 1820—AlgeBase. World-Wide Electronic Publication, National University of Ireland, Galway.

7. Amador-Castro, F.; García-Cayuela, T.; Alper, HS; Rodriguez-Martinez, V.; Carrillo-Nieves, D. Valorisering av pelagisk Sargassum-biomasse til bærekraftige applikasjoner: Aktuelle trender og utfordringer. J. Environ. Manag. 2021, 283, 112013. [CrossRef]

8. Daniel, SL; Kiril, B.; Leonel, P. Produksjon av biogjødsel fra Ascophyllum nodosum og Sargassum muticum (Phaeophyceae). J. Oceanol. Limnol. 2019, 37, 918–927. [CrossRef]

9. Ghaffar Shahriari, A.; Mohkami, A.; Niazi, A.; Hamed Ghodoum Parizipour, M.; Habibi-Pirkoohi, M. Bruk av brunalger (Sargassum angustifolium) ekstrakt for forbedring av tørketoleranse hos raps (Brassica napus L.). Iran. J. Biotechnol. 2021, 19, e2775. [CrossRef]

10. Oliveira, JV; Alves, MM; Costa, JC Optimalisering av biogassproduksjon fra Sargassum Sp. Bruk av et design av eksperimenter for å vurdere samtidig fordøyelse med glyserol og avfall av stekeolje. Bioressur. Teknol. 2015, 175, 480–485. [CrossRef]

11. Giovanna Lopresto, C.; Paletta, R.; Filippelli, P.; Galluccio, L.; de la Rosa, C.; Amaro, E.; Jáuregui-Haza, U.; Atilio de Frias, J. Sargassum Invasjon i Karibien: En mulighet for kystsamfunn til å produsere bioenergi basert på bioraffineri – en oversikt. Waste Biomasse Valorization 2022, 13, 2769–2793. [CrossRef]

12. Luis Godínez-Ortega, J.; Cuatlán-Cortés, JV; López-Bautista, JM; van Tussenbroek, BI A Natural History of Floating Sargassum Species (Sargasso) fra Mexico. I naturhistorie og økologi i Mexico og Mellom-Amerika; IntechOpen: London, Storbritannia, 2021.

13. Soleimani, S.; Yousefzadi, M.; Nezhad, SBM; Pozharitskaya, ON; Shikov, AN Evaluering av fraksjoner ekstrahert fra Polycladia Myrica: Biologiske aktiviteter, UVR-beskyttende effekt og stabilitet av kremformulering basert på det. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 1763–1777. [CrossRef]

14. Serrão, EA; Alice, LA; Brawley, SH Evolution of the Fucaceae (Phaeophyceae) Infrred fra NrDNA-ITS. J. Physiol. 1999, 35, 382–394. [CrossRef]

15. Patarra, RF; Paiva, L.; Neto, AI; Lima, E.; Baptista, J. Næringsverdi av utvalgte makroalger. J. Appl. Phycol. 2011, 23, 205–208. [CrossRef]

16. Lopes, G.; Barbosa, M.; Vallejo, F.; Gil-Izquierdo, Á.; Andrade, PB; Valentão, P.; Pereira, DM; Ferreres, F. Profilering av Phlorotanniner fra Fucus spp. av den nordlige portugisiske kystlinjen: Kjemisk tilnærming av HPLC-DAD-ESI/MSn og UPLC-ESI-QTOF/MS. Algal Res. 2018, 29, 113–120. [CrossRef]

17. Stansbury, J.; Saunders, P.; Winston, D. Fremme sunn skjoldbruskfunksjon med jod, blæretang, guggul og iris. J. Restor. Med. 2013, 1, 83–90. [CrossRef]

18. Guiry, MD; Guiry, GM Fucus Linnaeus, 1753—AlgeBase. World-Wide Electronic Publication, National University of Ireland, Galway.

19. Rasul, F.; Gupta, S.; Olas, JJ; Gechev, T.; Sujeeth, N.; Mueller-Roeber, B. Grunning med et tangekstrakt forbedrer kraftig tørketoleransen ved Arabidopsis. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 1469. [CrossRef] [PubMed]

20. Shukla, PS; Mantin, EG; Adil, M.; Bajpai, S.; Critchley, AT; Prithiviraj, B. Ascophyllum nodosum-baserte biostimulanter: Bærekraftige anvendelser i landbruket for stimulering av plantevekst, stresstoleranse og sykdomsbehandling. Front. Plant Sci. 2019, 10, 655. [CrossRef] [PubMed]

21. Vodouhè, M.; Marois, J.; Guay, V.; Leblanc, N.; Weisnagel, SJ; Bilodeau, J.-F.; Jacques, H. Marginal effekt av brun tang Ascophyllum nodosum og Fucus vesiculosus-ekstrakt på metabolsk og inflammatorisk respons hos overvektige og overvektige prediabetiske personer. Mar. Drugs 2022, 20, 174. [CrossRef] [PubMed]

22. Fraser, CI; Vel, M.; Nelson, WA; Macaya, EC; Hay, CH; McCarthy, C.; Velásquez, M.; Nelson, WA; Macaya, EC; Hay, CH Den biogeografiske betydningen av oppdrift i makroalger: en casestudie av den sørlige oksetare-slekten Durvillaea (Phaeophyceae), inkludert beskrivelser av to nye arter. J. Physiol. 2007, 56, 23–36. [CrossRef]

23. Capon, RJ; Barrow, RA; Rochfort, S.; Jobliig, M.; Skene, C.; Lacey, E.; Gill, JH; Friedel, T.; Wadsworth, D.; Jobling, M.; et al. Marine Nematocider: Tetrahydrofuraner fra en sør-australsk brunalge, Notheia Anomaliz. Tetrahedron 1998, 54, 2227–2242. [CrossRef]

24. Mueller, R.; Wright, JT; Bolch, CJSS Historisk demografi og koloniseringsveier for den utbredte tidevannstangen Hormosira banksii (Phaeophyceae) i Sørøst-Australia. J. Physiol. 2018, 54, 56–65. [CrossRef]

25. Clayton, MN Circumscription og fylogenetiske forhold til den sørlige halvkule-familien Seirococcaceae (Phaeophyceae). Bot. mars 1994, 37, 213–220. [CrossRef]

26. Kumar, LRG; Paul, PT; Anas, KK; Tejpal, CS; Chatterjee, NS; Anupama, TK; Mathew, S.; Ravishankar, CN Phlorotannins – Bioaktivitet og utvinningsperspektiver. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 2173–2185. [CrossRef] [PubMed]

27. Hermund, DB; Torsteinsen, H.; Vega, J.; Figueroa, FL; Jacobsen, C. Screening for nye kosmetiske produkter fra brunalger Fucus vesiculosus med antioksidant- og fotobeskyttende egenskaper. Marine Drugs 2022, 20, 687. [CrossRef]

28. Lashika Blue Filter Sunscreen SPF 45 PA plus plus plus med brun tang—30 ml.

29. Hello Sunny Essence Sun Stick Glow SPF50 plus Pa plus plus plus plus .

30. Koivikko, R.; Loponen, J.; Honkanen, T.; Jormalainen, V. Innhold av løselige, celleveggbundne og eksuderte phlorotanniner i brunalgen Fucus vesiculosus, med implikasjoner på deres økologiske funksjoner. J. Chem. Ecol. 2005, 31, 195–212. [CrossRef]

31. Machu, L.; Misurcova, L.; Vavra Ambrozova, J.; Orsavova, J.; Mlcek, J.; Sochor, J.; Jurikova, T. Fenolinnhold og antioksidantkapasitet i algematprodukter. Molecules 2015, 20, 1118–1133. [CrossRef]

32. Sabeena Farvin, KH; Jacobsen, C. Phenolic Compounds and Antioxidant Activities of Selected Arts of Seaweeds from Danish Coast. Food Chem. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]

33. Kim, SM; Kang, SW; Jeon, J.-S.; Jung, Y.-J.; Kim, W.-R.; Kim, CY; Um, B.-H. Bestemmelse av hovedflorotanniner i Eisenia-sykler ved bruk av hydrofil interaksjonskromatografi: sesongvariasjon og ekstraksjonsegenskaper. Food Chem. 2013, 138, 2399–2406. [CrossRef]

34. Connan, S.; Goulard, F.; Stiger, V.; Deslandes, E.; Gall, EA Interspesifikke og tidsmessige variasjoner i Phlorotannin-nivåer i en samling av brunalger. Bot. mars 2004, 47, 410–416. [CrossRef]

35. Lopes, G.; Sousa, C.; Silva, LR; Pinto, E.; Andrade, PB; Bernardo, J.; Mouga, T.; Valentão, P. Kan Phlorotannins rensede ekstrakter utgjøre et nytt farmakologisk alternativ for mikrobielle infeksjoner med assosierte betennelsestilstander? PLoS ONE 2012, 7, e31145. [CrossRef]

36. Obluchinskaya, ED; Pozharitskaya, ON; Zakharov, DV; Flisyuk, EV; Terninko, II; Generalova, YE; Smekhova, IE; Shikov, AN Den biokjemiske sammensetningen og antioksidantegenskapene til Fucus vesiculosus fra den arktiske regionen. Mar. Drugs 2022, 20, 193. [CrossRef]

37. Pedersen, A. Studies on Phenol Content and Heavy Metal Uptake in Fucoids. I ellevte internasjonale tangsymposium. Utviklingen innen hydrobiologi; Bird, CJ, Ragan, MA, red.; Springer: Dordrecht, Nederland, 1984; Bind 22, s. 498–504.

38. Connan, S.; Stengel, DB Effekter av omgivende saltholdighet og kobber på brunalger: 2. Interaktive effekter på fenolbasseng og vurdering av metallbindingskapasiteten til Phlorotannin. Aquat. Toxicol. 2011, 104, 1–13. [CrossRef] [PubMed]

39. Kamiya, M.; Nishio, T.; Yokoyama, A.; Yatsuya, K.; Nishigaki, T.; Yoshikawa, S.; Ohki, K. Sesongvariasjon av Phlorotannin i Sargassacean-arter fra kysten av Japanhavet. Phycol. Res. 2010, 58, 53–61. [CrossRef]

40. Ragan, MA; Jensen, A. Kvantitative studier på brunalgefenoler. II. Sesongvariasjon i polyfenolinnhold i Ascophyllum Nodosum (L.) Le Jol. og Fucus vesiculosus (L.). J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1978, 34, 245–258. [CrossRef]

41. Pavia, H.; Toth, GB Påvirkning av lys og nitrogen på Phlorotannin-innholdet i de brune tangene Ascophyllum nodosum og Fucus vesiculosus. Hydrobiologia 2000, 440, 299–305. [CrossRef]

42. Pavia, H.; Brock, E. Ekstrinsiske faktorer som påvirker Phlorotannin-produksjonen i brunalgen Ascophyllum nodosum. Mar. Ecol. Prog. Ser. 2000, 193, 285–294. [CrossRef]

43. Tala, F.; Velásquez, M.; Mansilla, A.; Macaya, EC; Thiel, M. Bredde- og sesongmessige effekter på kortsiktig akklimatisering av flytende tarearter fra det sørøstlige Stillehavet. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2016, 483, 31–41. [CrossRef]

44. Sardari, RRRR; Prothmann, J.; Gregersen, O.; Turner, C.; Karlsson, EN Identifikasjon av Phlorotanniner i brunalger, Saccharina Latissima og Ascophyllum nodosum ved hjelp av ultrahøyytelses væskekromatografi koblet til høyoppløselig tandemmassespektrometri. Molecules 2021, 26, 43. [CrossRef]

45. Tierney, MS; Soler-Vila, A.; Rai, DK; Croft, AK; Brunton, NP; Smyth, TJ UPLC-MS Profilering av lavmolekylære Phlorotannin-polymerer i Ascophyllum nodosum, Pelvetia canaliculata og Fucus spiralis. Metabolomics 2014, 10, 524–535. [CrossRef]

46. ​​Catarino, MD; Silva, AAMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Silva, AAMS; Cardoso, SM Phlorotanniner fra Fucus vesiculosus: Modulering av inflammatorisk respons ved å blokkere NF-KB-signalvei. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 6897. [CrossRef]

47. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. Phlorotannin-ekstrakter fra fukaler karakterisert av HPLC-DAD-ESI-MSn: Tilnærminger til hyaluronidasehemmende kapasitet og antioksidantegenskaper. Mar Drugs 2012, 10, 2766–2781. [CrossRef]

48. Catarino, MD; Silva, AMS; Mateus, N.; Cardoso, SM Optimalisering av Phlorotannins-ekstraksjon fra Fucus vesiculosus og evaluering av deres potensiale for å forhindre metabolske forstyrrelser. Mar. Drugs 2019, 17, 162. [CrossRef] [PubMed]

49. Li, Y.; Fu, X.; Duan, D.; Liu, X.; Xu, JJJ; Gao, X. Ekstraksjon og identifisering av Phlorotanniner fra brunalgen, Sargassum fusiform (Harvey) Setchell. Mar. Drugs 2017, 15, 49. [CrossRef] [PubMed]

50. Wang, T.; Jónsdóttir, R.; Liu, H.; Gu, L.; Kristinsson, HG; Raghavan, S.; Ólafsdóttir, G. Antioksidantkapasiteter av phlorotanniner ekstrahert fra brunalger Fucus vesiculosus. J. Agric. Food Chem. 2012, 60, 5874–5883. [CrossRef] [PubMed]

51. Obluchinskaya, ED; Daurtseva, AV; Pozharitskaya, ON; Flisyuk, EV; Shikov, AN Naturlige dype eutektiske løsemidler som alternativer for å ekstrahere Phlorotanniner fra brunalger. Pharm. Chem. J. 2019, 53, 243–247. [CrossRef]

52. Kadam, SU; Tiwari, BK; O'Donnell, CP; O'Donnell, CP Anvendelse av nye utvinningsteknologier for bioaktive stoffer fra marine alger. J. Agric. Food Chem. 2013, 61, 4667–4675. [CrossRef] [PubMed]

53. Michalak, I.; Chojnacka, K. Algekstrakter: teknologi og fremskritt. Eng. Life Sci. 2014, 14, 581–591. [CrossRef]

54. Grosso, C.; Valentão, P.; Ferreres, F.; Andrade, PB; Mayer, AM Alternative og effektive utvinningsmetoder for marine-avledede forbindelser. Mar Drugs 2015, 13, 3182–3230. [CrossRef]

55. Meng, W.; Mu, T.; Sun, H.; Garcia-Vaquero, M. Phlorotannins: En gjennomgang av ekstraksjonsmetoder, strukturelle egenskaper, bioaktiviteter, biotilgjengelighet og fremtidige trender. Algal Res. 2021, 60, 102484. [CrossRef]

56. Lopes, G.; Barbosa, M.; Andrade, PB; Valentão, P. Phlorotannins fra Fucales: Potensial for å kontrollere hyperglykemi og diabetesrelaterte vaskulære komplikasjoner. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 3143–3152. [CrossRef]

57. Obluchinskaya, ED; Pozharitskaya, ON; Zakharova, LV; Daurtseva, AV; Flisyuk, EV; Shikov, AN Effekten av naturlige dype eutektiske løsemidler for ekstraksjon av hydrofile og lipofile forbindelser fra Fucus vesiculosus. Molecules 2021, 26, 4198. [CrossRef]

58. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Sattari, Z.; Al-Haddad, S.; Fakhraldeen, S.; Al-Ghunaim, A.; Al-Yamani, F. Enzym-assistert utvinning av bioaktive forbindelser fra brune tang og karakterisering. J. Appl. Phycol. 2020, 32, 615–629. [CrossRef]

59. Ank, G.; Antônio Perez Da Gama, B.; Pereira, RC Latitudinal variasjon i Phlorotannin Contents fra Southwestern Atlantic Brown Seaweeds. PeerJ 2019, 7, e7379. [CrossRef] [PubMed]

60. Tabassum, MR; Xia, A.; Murphy, JD Sesongvariasjon av kjemisk sammensetning og biometanproduksjon fra brun tang Ascophyllum nodosum. Bioressur. Teknol. 2016, 216, 219–226. [CrossRef]

61. Hermund, DB; Heung, SY; Thomsen, BR; Akoh, CC; Jacobsen, C. Forbedring av oksidativ stabilitet av hudpleieemulsjoner med antioksidantekstrakter fra brunalge Fucus vesiculosus. J. Am. Olje Chem. Soc. 2018, 95, 1509–1520. [CrossRef]

62. Ummat, V.; Tiwari, BK; Jaiswal, AK; Condon, K.; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J.; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Optimalisering av ultralydfrekvens, ekstraksjonstid og løsemiddel for utvinning av polyfenoler, phlorotanniner og tilhørende antioksidantaktivitet fra brune tang. Mar. Drugs 2020, 18, 250. [CrossRef]

63. Sumampouw, GA; Jacobsen, C.; Getachew, AT Optimalisering av fenoliske antioksidanterekstraksjon fra Fucus vesiculosus ved trykksatt væskeekstraksjon. J. Appl. Phycol. 2021, 33, 1195–1207. [CrossRef]

64. Yuan, Y.; Zhang, J.; Fan, J.; Clark, J.; Shen, P.; Li, Y.; Zhang, C. Mikrobølgeassistert utvinning av fenoliske forbindelser fra fire økonomiske brune makroalgearter og evaluering av deres antioksidantaktiviteter og hemmende effekter på -amylase, -glukosidase, bukspyttkjertellipase og tyrosinase. Mat Res. Int. 2018, 113, 288–297. [CrossRef]

65. ˇCagalj, M.; Skroza, D.; Tabaneli, G.; Özogul, F.; Šimat, V. Maksimere antioksidantkapasiteten til Padina pavonica ved å velge riktige tørke- og ekstraksjonsmetoder. Prosesser 2021, 9, 587. [CrossRef]

66. Amarante, SJ; Catarino, MD; Marçal, C.; Silva, AMS; Ferreira, R.; Cardoso, SM Mikrobølgeassistert utvinning av Phlorotanniner fra Fucus vesiculosus. Mar. Drugs 2020, 18, 559. [CrossRef]

67. Bian, C.; Gao, J.; Leng, X.; Sun, C.; Dai, L.; Xu, Z. Fuktighetsbevarende væske og metode for fremstilling av samme. Kinesisk patent CN103520065A, 22. januar 2014.

68. da Silva, JRM; Alves, CMM; Pinteus, SFG; Martins, AIM; Freitas, RPF; Pedrosa, RFP-prosess for å oppnå et Phlorotannin-anriket ekstrakt med anti-enzymatisk virkning for bruk i dermatologi. Europeisk patent EP3910064, 17. november 2021.

69. Prigent, A. Metode for å oppnå ekstrakter av marine alger. Internasjonalt patent WO2015071477A1, 21. mai 2015.

70. Stiger-Poivreau, V.; Connan, S.; Gager, L.; Coiffard, L.; Couteau, C.; Decoster, S.; Gombault, LN; Cotterei, C.; Mahe, A. Brunalgeekstrakter inkludert fenoliske forbindelser og deres kosmetiske bruksområder. Fransk patent FR3095348A1, 30. oktober 2020.

71. Tae, HL; Lee, JM; Park, SY Prosess for fremstilling av enzymbehandlede Hizikia fusiforme-ekstrakter som har immunforsterkende aktivitet og en funksjonell mat- og farmasøytisk sammensetning som omfatter det samme. Koreansk patent KR20140032101A, 14. mars 2014.

72. Liu, X.; Yuan, W.; Sharma-shivappa, R.; Zanten, J. Van Antioksidantaktivitet av Phlorotanniner fra brunalger. Int. J. Agric. Biol. Eng. 2017, 10, 184–191. [CrossRef]

73. Abdelhamid, A.; Jouini, M.; Bel Haj Amor, H.; Mzoughi, Z.; Dridi, M.; Ben Said, R.; Bouraoui, A. Fytokjemisk analyse og evaluering av antioksidant-, anti-inflammatorisk og antinociceptivt potensiale til phlorotannin-rike fraksjoner fra tre middelhavsbrun tang. Mar. Biotechnol. 2018, 20, 60–74. [CrossRef] [PubMed]

74. Lamuela-Raventós, RM Folin-Ciocalteu Metode for måling av totalt fenolinnhold og antioksidantkapasitet. Ved måling av antioksidantaktivitet og kapasitet: Nylige trender og anvendelser; John Wiley & Sons, Ltd.: Hoboken, NJ, USA, 2017; s. 107–115. ISBN 9781119135388.

75. Cotas, J.; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonc ˛alves, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Tangfenoler: Fra utvinning til applikasjoner. Mar. Drugs 2020, 18, 384. [CrossRef] [PubMed]

76. Everette, JD; Bryant, QM; Grønn, AM; Abbey, YA; Wangila, GW; Walker, RB Grundig studie av reaktiviteten til forskjellige forbindelsesklasser mot Folin-Ciocalteu-reagenset. J. Agric. Food Chem. 2010, 58, 8139–8144. [CrossRef] [PubMed]

77. Stern, JL; Hagerman, AE; Steinberg, PD; Winter, FC; Estes, JA En ny analyse for kvantifisering av brunalger-phlorotanniner og sammenligninger med tidligere metoder. J. Chem. Ecol. 1996, 22, 1273–1293. [CrossRef]

78. Steevensz, AJ; MacKinnon, SL; Hankinson, R.; Craft, C.; Connan, S.; Stengel, DB; Melanson, JE Profilering av florotanniner i brune makroalger ved væskekromatografi-høyoppløselig massespektrometri. Phytochem. Anal. 2012, 23, 547–553. [CrossRef]

79. Agregán, R.; Munekata, PES; Franco, D.; Dominguez, R.; Carballo, J.; Lorenzo, JM Fenoliske forbindelser fra tre brune tangarter ved bruk av LC-DAD–ESI-MS/MS. Mat Res. Int. 2017, 99, 979–985. [CrossRef]

80. Glombitza, KW; Schmidt, A. Trihydroxyphlorethols fra brunalgen Carpophyllum angustifolium. Fytokjemi 1999, 51, 1095–1100. [CrossRef]

81. Sailler, B.; Glombitza, KW Phlorethols og Fucophlorethols fra brunalgen Cystophora retroflexa. Phytochemistry 1999, 50, 869–881. [CrossRef]

82. Glombitza, KW; Keusgen, M.; Hauperich, S. Fucophlorethols fra brunalgene Sargassum spinuligerum og Cystophora torulosa. Phytochemistry 1997, 46, 1417–1422. [CrossRef]

83. Glombitza, KW; Keusgen, M. Fuhalols og Deshydroxyfuhalols fra brunalgen Sargassum spinuligerum. Fytokjemi 1995, 38, 987–995. [CrossRef]

84. Glombitza, KW; Schmidt, A. Nonhalogenated and Halogenated Phlorotannins from the Brown Alga Carpophyllum angustifolium. J. Nat. Prod. 1999, 62, 1238–1240. [CrossRef]

85. Koch, M.; Gregson, RP Bromerte phlorethols og nonhalogenated phlorotannins fra brunalgen Cystophora overbelastet. Phytochemistry 1984, 23, 2633–2637. [CrossRef]

86. Sailler, B.; Glombitza, KW Halogenerte Phlorethols og Fucophlorethols fra brunalgen Cystophora retroflexa. Nat. Toxins 1999, 7, 57–62. [CrossRef]

87. Koivikko, R.; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Høyytelses væskekromatografisk analyse av Phlorotanniner fra brunalgen Fucus vesiculosus. Phytochem. Anal. 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]

88. Corona, G.; Ji, Y.; Anegboonlap, P.; Hotchkiss, S.; Gill, C.; Yaqoob, P.; Spencer, JPE; Rowland, I. Gastrointestinale modifikasjoner og biotilgjengelighet av brune tang-phlorotanniner og effekter på inflammatoriske markører. Br. J. Nutr. 2016, 115, 1240–1253. [CrossRef] [PubMed]

89. Sentkowska, A.; Pyrzynska, K. HILIC Kromatografi: Kraftig teknikk i analyse av polyfenoler. I polyfenoler i planter; Academic Press: Cambridge, MA, USA, 2019; s. 341–351. [CrossRef]

90. Marrubini, G.; Appelblad, P.; Maietta, M.; Papetti, A. Hydrophilic Interaction Chromatography in Food Matrices Analysis: En oppdatert gjennomgang. Food Chem. 2018, 257, 53–66. [CrossRef]

91. Pyrzynska, K.; Sentkowska, A. Nylig utvikling i HPLC-separasjon av fenoliske næringsmiddelforbindelser. Crit. Rev. Anal. Chem. 2015, 45, 41–51. [CrossRef]

92. Montero, L.; Sánchez-Camargo, AP; García-Cañas, V.; Tanniou, A.; Stiger-Pouvreau, V.; Russo, M.; Rastrelli, L.; Cifuentes, A.; Herrero, M.; Ibáñez, E. Anti-proliferativ aktivitet og kjemisk karakterisering ved omfattende to-dimensjonal væskekromatografi koblet til massespektrometri av Phlorotanniner fra den brune makroalgen Sargassum muticum samlet på nord-atlantiske kyster. J. Chromatogr. 2016, 1428, 115–125. [CrossRef]

93. Swartz, M. HPLC-detektorer: en kort gjennomgang. J. Liq. Chromatogr. Relat. Teknol. 2010, 33, 1130–1150. [CrossRef]

94. Vissers, AM; Caligiani, A.; Sforza, S.; Vincken, JP; Gruppen, H. Phlorotannin Sammensetning av Laminaria digitata. Phytochem. Anal. 2017, 28, 487–495. [CrossRef]

95. Olate-Gallegos, C.; Barriga, A.; Vergara, C.; Fredes, C.; García, P.; Giménez, B.; Robert, P. Identifikasjon av polyfenoler fra chilenske brune tangekstrakter av LC-DAD-ESI-MS/MS. J. Aquat. Food Prod. Teknol. 2019, 28, 375–391. [CrossRef]

96. Catarino, MD; Fernandes, I.; Oliveira, H.; Carrascal, M.; Ferreira, R.; Silva, AMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Cardoso, SM Antitumoraktivitet av Fucus vesiculosus-avledede phlorotanniner gjennom aktivering av apoptotiske signaler i gastriske og kolorektale tumorcellelinjer. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 7604. [CrossRef] [PubMed]

97. Audibert, L.; Fauchon, M.; Blanc, N.; Hauchard, D.; Ar Gall, E.; Gall, EA Fenoliske forbindelser i den brune tangen Ascophyllum nodosum: distribusjon og radikal-rensende aktiviteter. Phytochem. Anal. 2010, 21, 399–405. [CrossRef]

98. Heffernan, N.; Brunton, NP; FitzGerald, RJ; Smyth, TJ Profilering av molekylvekten og den strukturelle isomermengden av makroalger-avledede Phlorotanniner. Mar Drugs 2015, 13, 509–528. [CrossRef]

99. Kirke, DA; Smyth, TJ; Rai, DK; Kenny, O.; Stengel, DB Den kjemiske og antioksidantstabiliteten til isolerte lavmolekylære phlorotanniner. Food Chem. 2017, 221, 1104–1112. [CrossRef] [PubMed]

100. Zhang, R.; Yuen, AKL; Magnusson, M.; Wright, JT; de Nys, R.; Mestere, AF; Maschmeyer, T. En sammenlignende vurdering av aktiviteten og strukturen til Phlorotanniner fra den brune tangen Carpophyllum flexuosum. Algal Res. 2018, 29, 130–141. [CrossRef]

101. Allwood, JW; Evans, H.; Austin, C.; McDougall, GJ Ekstraksjon, berikelse og LC-MSn-basert karakterisering av Phlorotanniner og relaterte fenoler fra brun tang, Ascophyllum nodosum. Mar. Drugs 2020, 18, 448. [CrossRef]

102. Koivikko, R.; Eränen, JK; Loponen, J.; Jormalainen, V. Variasjon av Phlorotanniner blant tre populasjoner av Fucus vesiculosus som avslørt ved HPLC og kolorimetrisk kvantifisering. J. Chem. Ecol. 2008, 34, 57–64. [CrossRef]

103. Kirke, DA; Rai, DK; Smyth, TJ; Stengel, DB En vurdering av tidsvariasjon i Phlorotannin-profilene med lav molekylvekt i fire intertidal brune makroalger. Algal Res. 2019, 41, 101550. [CrossRef]

104. Parys, S.; Kehraus, S.; Krick, A.; Glombitza, KW; Carmeli, S.; Klimo, K.; Gerhäuser, C.; König, GM In vitro kjemopreventivt potensial for fukofloretoler fra brunalgen Fucus vesiculosus L. ved antioksidantaktivitet og hemming av utvalgte cytokrom P450-enzymer. Phytochemistry 2010, 71, 221–229. [CrossRef]

105. Hermund, DB; Plaza, M.; Turner, C.; Jónsdóttir, R.; Kristinsson, HG; Jacobsen, C.; Nielsen, KF Strukturavhengig antioksidantkapasitet av Phlorotanniner fra islandske Fucus vesiculosus av UHPLC-DAD-ECD-QTOFMS. Food Chem. 2018, 240, 904–909. [CrossRef] [PubMed]

106. Ovchinnikov, DV; Bogolitsyn, KG; Druzhinina, AS; Kaplitsin, PA; Parshina, AE; Pikovskoi, II; Khoroshev, OY; Turova, PN; Stavrianidi, AN; Shpigun, OA Studie av polyfenolkomponenter i ekstrakter av arktiske brunalger av Fucus vesiculosus-type ved væskekromatografi og massespektrometri. J. Anal. Chem. 2020, 75, 633–639. [CrossRef]

107. Kellogg, J.; Grace, MH; Lila, MA Phlorotanniner fra Alaskan Seaweed hemmer karbolytisk enzymaktivitet. Mar Drugs 2014, 12, 5277–5294. [CrossRef] [PubMed]

108. Kellogg, J.; Esposito, D.; Grace, MH; Komarnytsky, S.; Lila, MA Alaskan Seaweeds reduserer inflammasjon i RAW 264.7 makrofager og reduserer lipidakkumulering i 3T3-L1-adipocytter. J. Funksjon. Foods 2015, 15, 396–407. [CrossRef]

109. Baldrick, FR; McFadden, K.; Ibars, M.; Sung, C.; Moffatt, T.; Megarry, K.; Thomas, K.; Mitchell, P.; Wallace, JMW; Pourshahidi, LK; et al. Effekten av et (poly)fenolrikt ekstrakt fra brunalgen Ascophyllum nodosum på DNA-skade og antioksidantaktivitet i en overvektig eller fedmepopulasjon: En randomisert kontrollert prøvelse. Er. J. Clin. Nutr. 2018, 108, 688–700. [CrossRef]

110. Vázquez-Rodríguez, B.; Gutiérrez-Uribe, JA; Antunes-Ricardo, M.; Santos-Zea, L.; Cruz-Suárez, LE Ultralyd-assistert utvinning av Phlorotanniner og polysakkarider fra Silvetia compressa (Phaeophyceae). J. Appl. Phycol. 2020, 32, 1441–1453. [CrossRef]

111. Keusgen, M.; Glombitza, KW Phlorethols, Fuhalols og deres derivater fra brunalgen Sargassum spinuligerum. Phytochemistry 1995, 38, 975–985. [CrossRef]

112. Keusgen, M.; Glombitza, KW Pseudofuhaloler fra brunalgen Sargassum spinuligerum. Phytochemistry 1997, 46, 1403–1415. [CrossRef]

113. Vijayan, R.; Chitra, L.; Penislusshiyan, S.; Palvannan, T. Utforsker bioaktiv fraksjon av Sargassum wightii: In vitro klargjøring av angiotensin-i-konverterende enzymhemming og antioksidantpotensial. Int. J. Food Prop. 2018, 21, 674–684. [CrossRef]

114. Kord, A.; Foudil-Cherif, Y.; Amiali, M.; Boumechhour, A.; Benfares, R. Phlorotannins sammensetning, radikal rensekapasitet og reduserende kraft av fenoler fra brunalgen Cystoseira sauvageauana. J. Aquat. Food Prod. Teknol. 2021, 30, 426–438. [CrossRef]

115. Gheda, S.; Naby, MA; Mohamed, T.; Pereira, L.; Khamis, A. Antidiabetisk og antioksidantaktivitet av phlorotanniner ekstrahert fra den brune tangen Cystoseira compressa hos streptozotocin-induserte diabetiske rotter. Environ. Sci. Forurense. Res. 2021, 28, 22886–22901. [CrossRef] [PubMed]

116. Trifan, A.; Vasincu, A.; Luca, SV; Neophytou, C.; Wolfram, E.; Opitz, SEW; Sava, D.; Bucur, L.; Cioroiu, BI; Miron, A.; et al. Avdekke potensialet til tang fra Svartehavskysten i Romania som kilder til bioaktive forbindelser. Del I: Cystoseira barbata (Stackhouse) C. Agardh. Food Chem. Toxicol. 2019, 134, 110820. [CrossRef] [PubMed]

117. Gonçalves-Fernández, C.; Sineiro, J.; Moreira, R.; Gualillo, O. Ekstraksjon og karakterisering av phlorotannin-anrikede fraksjoner fra den atlantiske tangen Bifurcaria bifurcata og evaluering av deres cytotoksiske aktivitet i murin cellelinje. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 2573–2583. [CrossRef]

118. Catarino, MD; Alves-Silva, JM; Falcão, SI; Vilas-Boas, M.; Jordão, M.; Cardoso, SM Kromatografi som et verktøy for identifisering av bioaktive forbindelser i honningbiprodukter av botanisk opprinnelse. I kjemi, biologi og potensielle anvendelser av honningbier planteavledede produkter; Cardoso, SM, Silva, AMS, red.; Bentham Science Publishers: Sharjah, De forente arabiske emirater, 2016; s. 89–149. ISBN 9781681082370.

119. Ford, L.; Theodoridou, K.; Sheldrake, GN; Walsh, PJ En kritisk gjennomgang av analytiske metoder som brukes for kjemisk karakterisering og kvantifisering av Phlorotannin-forbindelser i brune tang. Phytochem. Anal. 2019, 30, 587–599. [CrossRef] [PubMed]

120. Isaza Martínez, JH; Torres Castañeda, HG Forberedelse og kromatografisk analyse av Phlorotanniner. J. Chromatogr. Sci. 2013, 51, 825–838. [CrossRef]

121. Rajauria, G. Optimalisering og validering av omvendt fase HPLC-metode for kvalitativ og kvantitativ vurdering av polyfenoler i tang. J. Pharm. Biomed. Anal. 2018, 148, 230–237. [CrossRef]

122. Kumar, Y.; Singhal, S.; Tarafdar, A.; Pharande, A.; Ganesan, M.; Badgujar, PC Ultralyd-assistert ekstraksjon av utvalgte spiselige makroalger: Effekt på antioksidantaktivitet og kvantitativ vurdering av polyfenoler ved væskekromatografi med tandem massespektrometri (LC-MS/MS). Algal Res. 2020, 52, 102114. [CrossRef]

123. Catarino, DM; Silva, MA; Cardoso, MS Fucaceae: En kilde til bioaktive Phlorotanniner. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 1327. [CrossRef]

124. Pantidos, N.; Boath, A.; Lund, V.; Conner, S.; McDougall, GJ Fenolrike ekstrakter fra spiselig tang, Ascophyllum nodosum, Hemmer -Amylase og -Glukosidase: Potensielle antihyperglykemiske effekter. J. Funksjon. Matvarer 2014, 10, 201–209. [CrossRef]

125. Karthik, R.; Manigandan, V.; Sheeba, R.; Saravanan, R.; Rajesh, PR Strukturell karakterisering og sammenlignende biomedisinske egenskaper av Phloroglucinol fra indiske brune tang. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3561–3573. [CrossRef]

126. Parys, S.; Kehraus, S.; Pete, R.; Küpper, FC; Glombitza, K.-W.; König, GM sesongvariasjon av polyfenoler i Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae). Eur. J. Physiol. 2009, 44, 331–338. [CrossRef]

127. Shrestha, S.; Zhang, W.; Smid, SD Phlorotannins: En gjennomgang av biosyntese, kjemi og bioaktivitet. Mat Biosci. 2021, 39, 100832. [CrossRef]

128. Erpel, F.; Mateos, R.; Pérez-Jiménez, J.; Pérez-Correa, JR Phlorotanniner: Fra isolasjon og strukturell karakterisering, til evaluering av deres antidiabetiske og antikreftpotensial. Mat Res. Int. 2020, 137, 109589. [CrossRef] [PubMed]

129. Jégou, C.; Kervarec, N.; Cérantola, S.; Bihannic, I.; Stiger-Pouvreau, V. NMR Bruk for å kvantifisere Phlorotanniner: Tilfellet av Cystoseira tamariscifolia, en phloroglucinol-produserende brun makroalge i Bretagne (Frankrike). Talanta 2015, 135, 1–6. [CrossRef]

130. Jégou, C.; Culioli, G.; Kervarec, N.; Simon, G.; Stiger-Pouvreau, V. LC/ESI-MSn og 1H HR-MAS NMR-analytiske metoder som nyttige taksonomiske verktøy innenfor slekten Cystoseira C. Agardh (Fucales; Phaeophyceae). Talanta 2010, 83, 613–622. [CrossRef]

131. Ford, L.; Stratakos, AC; Theodoridou, K.; Dick, JTA; Sheldrake, GN; Linton, M.; Corcionivoschi, N.; Walsh, PJ Polyfenoler fra brune tang som et potensielt antimikrobielt middel i dyrefôr. ACS Omega 2020, 5, 9093–9103. [CrossRef]

132. Glombitza, KW; Rosener, HU; Müller, D. Bifuhalol Und Diphlorethol Aus Cystoseira tamariscifolia. Phytochemistry 1975, 14, 1115–1116. [CrossRef]

133. Jacobsen, C.; Sørensen, A.-DM; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermund, DB Karakterisering og anvendelser av nye antioksidanter fra tang. Annu. Rev. Food Sci. Teknol. 2019, 10, 541–568. [CrossRef]

134. Mateos, R.; Pérez-Correa, JR; Domínguez, H. Bioaktive egenskaper til marine fenoler. Mar. Drugs 2020, 18, 501. [CrossRef]

135. Glombitza, KW; Hauperich, S.; Keusgen, M. Phlorotanniner fra brunalgene Cystophora torulosa og Sargassum spinuligerum. Nat. Toxins 1997, 5, 58–63. [CrossRef]

136. Koch, M.; Glombitza, KW; Rösener, HU Polyhydroksyfenyletere fra Bifurcaria bifurcata. Phytochemistry 1981, 20, 1373–1379. [CrossRef]

137. Cérantola, S.; Breton, F.; Gall, EA; Deslandes, E. Samtidig forekomst og antioksidantaktiviteter av Fucol og Fucophlorethol Klasser av polymere fenoler i Fucus spiralis. Bot. mars 2006, 49, 347–351. [CrossRef]

138. McInnes, AG; Ragan, MA; Smith, DG; Walter, JA The High Molecular Weight Polyphloroglucinoles of the Marine Brown Alga Fucus vesiculosus L. 1H and 13C Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy. Kan. J. Chem. 1985, 63, 304–313. [CrossRef]

139. le Lann, K.; Surget, G.; Couteau, C.; Coiffard, L.; Cérantola, S.; Gaillard, F.; Larnicol, M.; Zubia, M.; Guérard, F.; Poupart, N.; et al. Solkrem-, antioksidant- og bakteriedrepende kapasiteter av Phlorotanniner fra den brune makroalgen Halidrys siliquosa. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3547–3559. [CrossRef]